Progressi nella ricerca genetica sui pesci pagliaccio
I ricercatori sviluppano metodi per creare pesci pagliaccio transgenici stabili.
― 8 leggere min
Indice
Il pesce pagliaccio, conosciuto anche come pesce pagliaccio falso, è una creatura molto nota che si trova nei reef corallini. Questi pesci si distinguono per la loro stretta relazione con le anemoni di mare, la loro popolarità negli acquari e le loro frequenti apparizioni in film e cartoni animati. Gli scienziati studiano questi pesci per vari processi biologici, incluso come trovano le loro case, la loro capacità di vedere la luce ultravioletta, i ruoli dei maschi e delle femmine durante l'accoppiamento e il loro modo unico di cambiare sesso.
Di solito, questi pesci vivono in piccoli gruppi, formando un piccolo territorio intorno alla loro anemone ospite. Questo comportamento li rende più facili da studiare in laboratorio, perché possono essere tenuti in vasche più piccole mostrandosi comunque comportamenti naturali, come prendersi cura dei piccoli o cambiare sesso. I ricercatori possono allevare questi pesci in cattività, permettendo loro di osservare ogni fase della loro vita.
Recentemente, gli scienziati hanno iniziato a utilizzare una tecnologia chiamata CRISPR/Cas9 per modificare i geni dei pesci pagliaccio. Questo metodo prevede l'iniezione di materiali specifici nelle uova dei pesci per alterare il loro patrimonio genetico. Tuttavia, i ricercatori non hanno confermato se queste modifiche siano state trasmesse alla prole dei pesci o se potessero stabilire linee stabili per studi a lungo termine.
Per continuare a studiare efficacemente i pesci pagliaccio, è necessario sviluppare tecniche per garantire che i cambiamenti genetici possano essere ereditati dalla prossima generazione. Questo include l'aggiunta di nuovi geni al loro DNA, un processo chiamato transgenesi. Utilizzando marcatori specifici, i ricercatori possono selezionare quali cellule esprimono i nuovi geni, permettendo loro di studiare specifiche funzioni biologiche o comportamenti.
Sfide Attuali
Sebbene CRISPR/Cas9 abbia mostrato del potenziale per inserire geni, la sua efficacia può variare tra diversi tipi di cellule, rendendo difficile ottenere i cambiamenti desiderati senza un sacco di lavoro extra. Al contrario, un metodo derivato dal pesce medaka, chiamato sistema di trasposoni Tol2, si è dimostrato molto efficace per aggiungere geni in altre specie di pesci. Questo metodo è stato anche adattato con successo per l'uso in vari organismi non modello, rendendolo un buon candidato per la ricerca sui pesci pagliaccio.
Tuttavia, applicare il metodo Tol2 ai pesci pagliaccio presenta sfide uniche. Le uova dei pesci pagliaccio vengono deposte su superfici solide, e il loro tasso di mortalità embrionale è più alto rispetto ad altre specie. Inoltre, fino a ora, i ricercatori non sono riusciti a creare linee stabili di pesci pagliaccio transgenici.
In questo lavoro, gli scienziati miravano a sviluppare metodi per creare linee stabili di pesci pagliaccio transgenici. Hanno utilizzato il sistema Tol2 per creare pesci pagliaccio che esprimono la proteina fluorescente verde (GFP), che permette ai ricercatori di tracciare la presenza del nuovo Gene. Hanno anche delineato metodi per l'iniezione di materiali nelle uova, l'incubazione, l'allevamento delle larve e il controllo della presenza del nuovo gene.
Cura e Condizioni degli Animali
I pesci pagliaccio utilizzati in questo studio sono stati allevati in cattività da pesci originariamente forniti da un fornitore o donati da un altro ricercatore. Erano ospitati in acquari che contenevano 20 o 25 galloni d'acqua. L'acqua era mantenuta a condizioni specifiche per garantire che i pesci rimanessero sani. Questo includeva il mantenimento di un corretto livello di salinità, temperatura e pH, insieme a un regolare ciclo di luce per imitare i cicli naturali giorno e notte. I pesci erano forniti di un sito di nidificazione adeguato e venivano alimentati con cibo di alta qualità due volte al giorno.
Preparazione per l'Inserimento Genetico
Per portare a termine il processo di inserimento genetico, i ricercatori hanno preparato costrutti di DNA specifici per aiutare a inserire il nuovo gene nei pesci pagliaccio. Questo includeva la creazione di DNA plasmidico, che funge da veicolo per trasportare il gene. Inoltre, hanno creato RNA necessario per il funzionamento del sistema Tol2 nei pesci pagliaccio.
Le coppie di pesci pagliaccio di solito si riproducono ogni paio di settimane nel pomeriggio. Durante la riproduzione, le femmine mostrano comportamenti e segni fisici distintivi che indicano che stanno per deporre le uova. Dopo aver deposto le uova, il maschio le fertilizza. Le covate consistono solitamente in circa 1.000 uova. Dopo aver atteso un breve periodo per la fertilizzazione, i ricercatori hanno raccolto le uova per la microiniezione.
Per preparare le uova per l'iniezione, i ricercatori hanno rimosso con attenzione le uova dai loro piatti di deposizione e le hanno disposte in righe ordinate per facilitare il processo di iniezione. Hanno anche mantenuto le uova in un contenitore di acqua salata per prevenire l'essiccazione.
Processo di Iniezione
I ricercatori hanno creato aghi minuscoli per iniettare i materiali genetici nelle uova. La dimensione della punta dell'ago era critica, poiché un ago troppo piccolo poteva piegarsi o rompersi, mentre un ago troppo grande poteva causare danni e aumentare le possibilità di mortalità nelle uova. I ricercatori hanno scoperto che un diametro della punta dell'ago compreso tra 5 e 9 micrometri era ottimale.
Per le iniezioni vere e proprie, le uova sono state iniettate con una soluzione contenente acqua, sale, colorante alimentare per vedere meglio la soluzione, RNA per il sistema Tol2 e DNA plasmidico contenente il gene GFP. Ogni uovo ha ricevuto una piccola quantità della soluzione, e l'iniezione è stata eseguita con attenzione per ridurre al minimo i danni.
Le uova sono state poi restituite a un ambiente di incubazione dove le condizioni sono state mantenute per supportare il loro sviluppo. I ricercatori hanno monitorato da vicino le uova e controllato il tasso di Sopravvivenza degli embrioni iniettati.
Incubazione e Tassi di Sopravvivenza
I ricercatori hanno collocato le uova iniettate in vasche progettate per l'incubazione artificiale, assicurandosi che le uova ricevessero sufficiente aerazione e protezione da potenziali infezioni. Hanno cercato differenze nei tassi di sopravvivenza tra embrioni iniettati, embrioni di controllo e quelli cresciuti dai genitori.
Hanno condotto diversi esperimenti per identificare i migliori metodi per ridurre i tassi di mortalità e migliorare la sopravvivenza degli embrioni iniettati. Questa includeva il confronto di diverse tecniche di sterilizzazione per le vasche di incubazione e il test di vari trattamenti per proteggere gli embrioni dalle infezioni.
I ricercatori hanno scoperto che, sebbene molti fattori contribuissero alla sopravvivenza degli embrioni, gli embrioni incubati artificialmente mostravano generalmente tassi di sopravvivenza più bassi rispetto a quelli curati dai genitori. Inoltre, gli embrioni iniettati avevano tassi di sopravvivenza ancora più bassi rispetto ad altri gruppi.
Hanno registrato con attenzione i fattori che influenzavano i tassi di sopravvivenza, come il tempo trascorso dalla fertilizzazione delle uova prima dell'iniezione e i metodi utilizzati per la sterilizzazione delle vasche. Sono state apportate modifiche nelle preparazioni e nelle procedure per garantire i migliori risultati possibili.
Controllo dei Cambiamenti Genetici
Una volta che gli embrioni hanno raggiunto una certa età, i ricercatori li hanno esaminati sotto un particolare tipo di luce per controllare la presenza della proteina GFP. Quegli embrioni che brillavano di verde sono stati identificati come portatori del nuovo gene. Dopo questo screening iniziale, gli embrioni sopravvissuti sono stati incubati e allevati fino all'età adulta.
I ricercatori hanno prelevato piccoli campioni dalle pinne di questi pesci per analizzare il loro DNA e confermare la presenza del gene GFP. Hanno scoperto che una parte dei pesci del gruppo iniettato portava effettivamente il nuovo gene.
Accoppiamento e Prole
Dopo aver confermato che i pesci pagliaccio adulti portavano il gene GFP, alcuni individui selezionati sono stati accoppiati con femmine di tipo selvatico (normali) per vedere se il transgene potesse essere trasmesso alla prossima generazione. Le uova risultanti sono state esaminate in una fase successiva per determinare quante delle progenie portavano anche il gene GFP.
I risultati hanno mostrato che una percentuale della prima generazione (F1) di prole esprimeva il gene GFP, confermando che il gene era stato trasmesso attraverso la linea germinale. Alcuni di questi pesci F1 sono stati poi lasciati riprodurre, portando a una seconda generazione (F2) di prole. Una frazione significativa di queste larve F2 esprimeva anch'essa il GFP.
Conclusioni e Direzioni Future
Lo studio ha stabilito con successo metodi per creare le prime linee transgeniche stabili di pesci pagliaccio utilizzando il sistema Tol2. Sebbene il tasso di sopravvivenza complessivo per gli embrioni iniettati fosse basso, il grande numero di uova prodotte dai pesci pagliaccio ha permesso ai ricercatori di generare abbastanza linee transgeniche nonostante queste sfide.
La capacità di creare pesci pagliaccio transgenici apre nuove opportunità di ricerca. Non solo possono essere utilizzati per indagare domande biologiche di base, ma questi pesci possono anche aiutare a esplorare comportamenti complessi legati alla riproduzione, territorialità e interazioni con l'ambiente.
In futuro, i ricercatori pianificano di creare pesci pagliaccio che esprimano vari geni legati a funzioni specifiche, consentendo studi più rifiniti in laboratorio. Questa capacità di generare linee transgeniche nei pesci pagliaccio è un avanzamento entusiasmante per la comunità scientifica e la biologia marina.
Le tecniche sviluppate in questo studio saranno fondamentali per le future ricerche sui pesci pagliaccio e i loro parenti, portando a nuove intuizioni nella loro biologia ed ecologia. Questo lavoro dimostra il potenziale di utilizzare strumenti genetici per migliorare la comprensione del comportamento e dello sviluppo animale. Man mano che il campo della ricerca genetica continua a crescere, le possibilità per i pesci pagliaccio come organismi modello sono praticamente infinite.
Titolo: Generation of the First Transgenic Line of the Iconic Coral Reef Fish Amphiprion ocellaris
Estratto: The common clownfish, Amphiprion ocellaris, is an iconic coral reef fish, ubiquitous in the marine aquarium hobby and useful for studying a variety of biological processes (e.g., mutual symbiosis, ultraviolet vision, and protandrous sex change). Recently, CRISPR/Cas9 methods were developed for knocking out specific genes for mechanistic studies. Here, we expand the genetic toolkit for A. ocellaris by creating the first transgenic line using the Tol2 transposon system. Fertilized eggs were co-injected with Tol2 transposase mRNA and a plasmid encoding an Elongation factor 1 (Ef1): Green fluorescent protein (GFP) cassette at various concentrations, needle tip dimensions and timepoints post-fertilization. We compared various injection parameters and sterilization methods to maximize the survival of injected eggs. F0s (n=10) that were genotyped GFP+ were then raised to 6 months of age and crossed with wild-type (WT) females to confirm germline transmission. F1 offspring were also raised and crossed in the same manner. The highly efficient Tol2 transposon system resulted in a 37% rate of transgenesis for surviving eggs amounting to a 2.7% yield of all injected eggs surviving and being GFP+ (n= 160). Of these, 10 were raised to adulthood, 8 spawned, and 5/8 (62.5 %) produced GFP+ offspring. Further, two F1s crossed with WT females produced 53.8% and 54.2% GFP+ offspring respectively, confirming the creation of a stable line. This is, to our knowledge, the first generation of a transgenic line in any coral reef fish. The ability to express transgenes of interest in the iconic anemonefish opens the door to a new era of exploration into their fascinating biology.
Autori: Justin S Rhodes, G. J. Graham, E. M. Ibanez, L. J. Mitchell, K. E. Weis, L. T. Raetzman, F. Cortesi
Ultimo aggiornamento: 2024-07-10 00:00:00
Lingua: English
URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.05.597662
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.05.597662.full.pdf
Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
Modifiche: Questa sintesi è stata creata con l'assistenza di AI e potrebbe presentare delle imprecisioni. Per informazioni accurate, consultare i documenti originali collegati qui.
Si ringrazia biorxiv per l'utilizzo della sua interoperabilità ad accesso aperto.