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# La biologia# Biochimica

Uno studio rivela il comportamento della DNA polimerasi con filamenti modificati PST

L'analisi delle interazioni tra le DNA polimerasi e il DNA modificato PST mette in luce comportamenti di replicazione inaspettati.

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Indice

Le DNA polimerasi sono enzimi importanti che aiutano a fare copie del DNA. Hanno funzioni speciali per assicurarsi che costruiscano il DNA nel modo giusto. Se sbagliano, anche un errore può essere dannoso per gli organismi viventi. Per prevenire errori, queste polimerasi hanno una funzione di correzione che verifica se i filamenti di DNA sono accoppiati correttamente. Se c'è un errore, questa capacità di correzione permette all'enzima di aggiustarlo, assicurando che la copia del DNA avvenga in modo efficiente.

Per migliorare la durata dei filamenti di DNA, gli scienziati usano spesso modifiche chimiche speciali. Una di queste è il legame fosforotioato (PST), che aiuta il DNA a resistere alla degradazione da parte di enzimi chiamati nucleasi. Questi filamenti di DNA modificati, in particolare gli oligonucleotidi PST, vengono utilizzati in varie tecnologie mediche, comprese le terapie che silenziano i geni. Tuttavia, queste modifiche possono cambiare come il DNA interagisce con gli enzimi di copia, rendendo fondamentale studiare queste interazioni.

È interessante notare che non c'è stata molta ricerca su come questi oligonucleotidi PST si comportano quando incontrano varie DNA polimerasi dentro o fuori dalle cellule. Questi filamenti modificati PST possono attaccarsi parzialmente a un tipo di DNA chiamato DNA genomico o anche a DNA circolare trovato nelle cellule, spesso legato al cancro. Questo può creare situazioni in cui il DNA modificato appare per la polimerasi come un filamento normale, nonostante le discrepanze.

Ricerca Corrente

Questo studio indaga come certe DNA polimerasi gestiscono il DNA modificato PST, specialmente quando ci sono errori alle estremità di questi filamenti. Abbiamo esaminato come queste polimerasi interagiscono con i primer di DNA PST che presentano errori di varie dimensioni, da una singola base a sequenze più lunghe, insieme a modelli di DNA circolare. Il nostro obiettivo era vedere se il DNA con errori potesse comunque essere copiato efficacemente.

Abbiamo usato diversi tipi di polimerasi per vedere come si comportavano con primer di DNA PST e non modificati. Abbiamo scoperto che alcune polimerasi potevano oltrepassare questi errori in modi inaspettati, permettendo loro di allungare il filamento di DNA anche quando c'erano errori. Questo comportamento è stato osservato sia con errori identici che non identici, indicando un processo unico che avviene con il DNA modificato PST.

Materiali e Metodi

Abbiamo acquistato vari oligonucleotidi, che sono brevi filamenti di DNA, da fornitori. Questi oligonucleotidi sono stati preparati con modifiche specifiche e utilizzati nei nostri esperimenti senza bisogno di ulteriori pulizie. Enzimi come la ligasi del DNA e le polimerasi, che aiutano a assemblare e copiare il DNA, sono stati anche ottenuti da fornitori affidabili.

Abbiamo creato DNA circolare da questi oligonucleotidi usando reazioni specifiche, permettendoci di testare quanto bene le polimerasi potessero replicarsi usando primer modificati PST. Gli esperimenti hanno coinvolto la miscelazione di questi primer con il DNA circolare e le polimerasi per vedere quanto efficacemente veniva copiato il DNA. Abbiamo prestato particolare attenzione a come gli enzimi rispondevano a basi con errori, specialmente nel caso degli oligonucleotidi PST.

Risultati

I nostri esperimenti hanno mostrato che le polimerasi potevano continuare a copiare il DNA anche quando c'erano errori, soprattutto con i primer modificati PST. L'attività delle polimerasi variava a seconda del tipo di errore e della specifica polimerasi utilizzata, evidenziando una proprietà interessante degli oligonucleotidi PST.

Abbiamo notato che errori piccoli come una base potevano essere oltrepassati, portando a livelli inaspettati di copia del DNA. Questo fenomeno era coerente tra varie polimerasi, suggerendo che le modifiche apportate al DNA potrebbero influenzare come le polimerasi riconoscono e processano questi filamenti.

Inoltre, abbiamo testato varie combinazioni di errori e osservato come influenzassero la reazione. I risultati indicavano che sia errori identici che non identici potevano portare a una replicazione del DNA riuscita, aumentando la nostra comprensione di come si comportano questi filamenti modificati.

Meccanismi di Blocco

Per approfondire come il processo di copia potesse essere controllato, abbiamo esplorato un metodo utilizzando sequenze di blocco. Questi blocchi sono progettati per legarsi alle aree con errori, potenzialmente fermando le polimerasi dal continuare il processo di copia. Facendo questo, abbiamo mirato a capire come questi blocchi possano regolare l'attività di bypass degli errori.

I nostri risultati hanno rivelato che la presenza delle sequenze di blocco riduceva significativamente la capacità delle polimerasi di replicare il DNA con errori. Rimuovendo i blocchi si riprendeva la copia del DNA, indicando un meccanismo simile a un interruttore che potrebbe essere usato per controllare il processo. Questa scoperta apre la possibilità di utilizzare questi meccanismi in varie applicazioni, come tecnologie di biosensing.

Implicazioni per le Terapie

I risultati del nostro studio hanno importanti implicazioni per l'uso di oligonucleotidi modificati PST nelle terapie. Poiché questi filamenti modificati possono interagire con il DNA naturale nel corpo, qualsiasi copia non intenzionale potrebbe portare a preoccupazioni significative. Se le polimerasi amplificano erroneamente queste sequenze modificate, potrebbe verificarsi un aumento di certi geni nelle cellule, contribuendo possibilmente al cancro o ad altre malattie.

Comprendere come questi oligonucleotidi PST interagiscono con diversi tipi di DNA è cruciale per garantire che le terapie future siano sicure ed efficaci. La nostra ricerca sottolinea la necessità di un monitoraggio attento di come queste modifiche influenzano i percorsi di replicazione del DNA all'interno del corpo.

Direzioni Future

In conclusione, questo studio fa luce sulle proprietà uniche del DNA modificato PST e sulle sue interazioni con le DNA polimerasi. Abbiamo osservato una sorprendente capacità di queste polimerasi di superare gli errori durante la replicazione, il che apre nuove possibilità per utilizzare questo meccanismo in applicazioni di biocomputing e sensing.

Sfruttando questa conoscenza, possiamo progettare strumenti molecolari più efficaci e versatili per diagnostica e terapeutiche. Ulteriori ricerche si concentreranno sulla comprensione dei meccanismi sottostanti di queste interazioni e su come possano essere utilizzati in applicazioni reali, in particolare nella regolazione genica e nella terapia delle malattie.

Mentre avanziamo, sarà importante continuare a esplorare la relazione tra modifiche PST e i loro effetti sui sistemi biologici per realizzare appieno il loro potenziale sia in medicina che in tecnologia.

Fonte originale

Titolo: An anomalous 3'-terminal phosphorothioated mismatch bypass activity and its application as a binary molecular switch

Estratto: Phosphorothioated (PST) oligonucleotides are increasingly being used in RNA silencing, antisense, and biosensing applications. However, the possibilities and consequences of their desultory interactions with other possible nucleic acids and DNA polymerases inside the cell remain inadequately characterized. In this study, we report the discovery of an unusual terminal mismatch bypass activity involving 3'-PST containing DNA primers and certain strand displacement DNA polymerases. Using rolling circle DNA amplification, we have identified that strand displacement DNA polymerases such as phi29 and BST large fragment (LF) can bypass 3'-terminal PST mismatches upto 1 - 20 nt length. Next, we explore the length and sequence dependence of this unusual attribute, incubation in near-ambient and 60 - 65{degrees}C temperatures, and measures to blockade or modulate this mismatch bypass activity to create a binary fully nucleic acid-based and non-photocontrolled molecular switch (the first of its kind). After proposing possible underlying mechanisms for this activity, we discuss its potential consequences and applications.

Autori: Souradyuti Ghosh, S. Kumar, H. S. Gariya, C. Sharma, S. Parveen, V. K. Nair, M. Sengupta

Ultimo aggiornamento: 2024-07-27 00:00:00

Lingua: English

URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.27.605420

Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.27.605420.full.pdf

Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/

Modifiche: Questa sintesi è stata creata con l'assistenza di AI e potrebbe presentare delle imprecisioni. Per informazioni accurate, consultare i documenti originali collegati qui.

Si ringrazia biorxiv per l'utilizzo della sua interoperabilità ad accesso aperto.

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