Progressi nell'analisi della glicosilazione delle proteine
Nuovi metodi accelerano lo studio delle proteine glicozilate nella ricerca sulla salute.
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Indice
- Tecniche di Ricerca Attuali
- Cambiamento negli Approcci Analitici
- Obiettivi dello Studio
- Preparazione del Campione per l'Analisi
- Analisi della Spettrometria di Massa
- Panoramica dei Risultati
- Copertura delle Proteine e Intervallo Dinamico
- Valutazione dell'Efficienza del Nuovo Approccio
- Identificazione di Citochine a Bassa Abbondanza
- Implicazioni per la Ricerca Futura
- Conclusione
- Fonte originale
- Link di riferimento
La Glicosilazione delle proteine è un processo comune che avviene nel nostro corpo, dove le molecole di zucchero si attaccano alle proteine. Questo avviene sia mentre le proteine vengono create che subito dopo. La glicosilazione gioca un ruolo fondamentale nel funzionamento delle proteine, influenzando tutto, da come interagiscono con altre molecole nel corpo alla loro stabilità e solubilità. Poiché la glicosilazione può cambiare a causa di fattori come dieta, malattia e invecchiamento, capirla meglio può aiutare a scoprire nuovi Biomarcatori per condizioni di salute.
Tecniche di Ricerca Attuali
I recenti progressi nella tecnologia, in particolare nella Spettrometria di massa (un metodo per identificare e analizzare sostanze), hanno migliorato la nostra capacità di studiare la glicosilazione. I ricercatori sono stati in grado di identificare varie strutture di zucchero nel sangue, che potrebbero servire come potenziali biomarcatori per salute e malattia. Tuttavia, le attuali metodologie affrontano ancora sfide, come la difficoltà nell'analizzare miscele complesse di proteine nel sangue a causa delle loro concentrazioni variabili.
Per analizzare meglio le proteine glicosilate, gli scienziati di solito utilizzano una tecnica chiamata spettrometria di massa combinata con un processo che isola le proteine glicosilate da altri tipi di proteine. Questo di solito viene fatto con passaggi aggiuntivi che possono richiedere tempo.
Cambiamento negli Approcci Analitici
Negli ultimi anni, c'è stato un movimento verso un nuovo metodo chiamato acquisizione indipendente dai dati (DIA) nella spettrometria di massa. Questo metodo consente un'analisi più rapida selezionando più frammenti proteici contemporaneamente, piuttosto che solo uno. Sebbene l'approccio DIA stia guadagnando popolarità nello studio delle proteine normali, la sua applicazione alle proteine glicosilate non si è ancora completamente sviluppata.
Per migliorare l'analisi delle proteine glicosilate, i ricercatori hanno creato un flusso di lavoro che si concentra sull'analisi rapida di queste proteine utilizzando DIA. Apportando modifiche agli strumenti e ai metodi utilizzati, gli scienziati mirano a identificare le proteine in periodi più brevi senza perdere informazioni preziose.
Obiettivi dello Studio
L'obiettivo principale di questa ricerca è sviluppare un metodo per utilizzare DIA specificamente per analizzare le proteine glicosilate. I ricercatori hanno cercato di ottimizzare le loro tecniche per rendere l'analisi più rapida ed efficiente, mantenendo al contempo informazioni dettagliate sulle strutture proteiche.
Preparazione del Campione per l'Analisi
Lo studio è iniziato con la preparazione di campioni di sangue. Gli scienziati hanno mescolato il plasma sanguigno con un buffer speciale per rompere le proteine e prepararle per un'analisi ulteriore. Le proteine sono state poi scomposte in pezzi più piccoli utilizzando enzimi. Dopo questo passaggio, i ricercatori hanno concentrato le proteine glicosilate utilizzando una tecnica che sfrutta dei fili di cotone.
Successivamente, i campioni trattati sono stati sottoposti a spettrometria di massa, dove gli scienziati potevano identificare le varie proteine e i loro schemi di glicosilazione.
Analisi della Spettrometria di Massa
Sono state utilizzate due procedure di spettrometria di massa diverse. Un metodo era l'approccio tradizionale, che si concentra sull'analisi mirata, mentre l'altro era la nuova strategia che impiega DIA. I ricercatori hanno testato varie lunghezze di gradiente e impostazioni di energia di collisione per ottimizzare l'analisi e ottenere una migliore identificazione delle proteine glicosilate.
I ricercatori hanno monitorato l'efficacia di entrambi i metodi durante l'analisi dei risultati della spettrometria di massa. Hanno prestato particolare attenzione a quante diverse proteine potessero essere identificate e alla qualità complessiva dei dati prodotti da ciascun approccio.
Panoramica dei Risultati
Attraverso l'analisi, gli scienziati hanno scoperto che l'uso del nuovo metodo DIA ha permesso loro di identificare un numero maggiore di proteine glicosilate rispetto ai metodi tradizionali. Non solo hanno trovato più proteine, ma sono stati anche in grado di vedere le differenze negli zuccheri attaccati alle proteine in base a varie condizioni.
L'uso del metodo DIA ha mostrato risultati promettenti in termini di velocità ed efficienza, consentendo l'analisi di più campioni in tempi più brevi. Lo studio ha dimostrato che anche con tempi di analisi più brevi, i ricercatori potevano comunque ottenere intuizioni significative sui modelli di glicosilazione.
Copertura delle Proteine e Intervallo Dinamico
La ricerca ha mostrato che il metodo DIA potrebbe caratterizzare efficacemente proteine a bassa abbondanza nel plasma, che di solito sono difficili da rilevare. Gli scienziati hanno notato una vasta gamma di proteine glicosilate, coprendo un'ampia gamma di concentrazioni. Questa profondità di analisi è cruciale per comprendere le funzioni biologiche complesse e può migliorare significativamente la nostra conoscenza delle interazioni proteiche.
Valutazione dell'Efficienza del Nuovo Approccio
Come parte dello studio, i ricercatori hanno valutato quanto fosse efficace il nuovo metodo nel rilevare le proteine rispetto ai metodi tradizionali. Hanno scoperto che, sebbene accorciare il tempo di analisi portasse a una diminuzione del numero di identificazioni uniche di proteine glicosilate, mantenesse comunque un buon equilibrio tra velocità e qualità dei dati ottenuti.
Inoltre, hanno osservato che il nuovo metodo che utilizza DIA forniva risultati coerenti tra replicati tecnici, indicando la sua affidabilità come strumento analitico.
Citochine a Bassa Abbondanza
Identificazione diTra le proteine identificate, sono state messe in evidenza diverse citochine (proteine segnale importanti nella risposta immunitaria). Alcune citochine a bassa abbondanza non tipicamente rilevate nelle analisi standard sono state identificate con successo utilizzando il nuovo approccio DIA. Questo apre porte per ulteriori indagini sul loro ruolo nella salute e nella malattia.
Implicazioni per la Ricerca Futura
Lo studio mette in evidenza il potenziale dell'uso di metodi DIA ottimizzati nella ricerca sulla glicoproteomica. Consentendo l'identificazione rapida ed efficiente delle proteine glicosilate, questo approccio può contribuire a una migliore comprensione delle malattie e delle condizioni di salute.
Man mano che i ricercatori continuano a perfezionare questi metodi, potrebbero anche esplorare la quantificazione delle proteine a bassa abbondanza senza la necessità di preparazioni di campioni estese. Questo aspetto è fondamentale per rivelare la meccanica delle malattie e identificare nuovi biomarcatori per applicazioni cliniche.
Conclusione
In sintesi, questa ricerca sottolinea l'importanza della glicosilazione delle proteine e i progressi fatti nella sua analisi. Il nuovo metodo DIA sviluppato dimostra un grande potenziale per semplificare l'identificazione delle proteine glicosilate nel plasma sanguigno, offrendo risultati più rapidi mantenendo profondità e accuratezza. Questo metodo potrebbe aprire la strada a ulteriori esplorazioni sulle complessità della glicosilazione delle proteine e migliorare la nostra comprensione della salute umana e delle malattie.
Migliorando l'efficienza analitica e la sensibilità, i ricercatori sono meglio posizionati per scoprire i dettagli nascosti delle glicoproteine e delle loro funzioni vitali nel corpo. Le intuizioni ottenute qui possono servire da base per futuri studi, portando infine a progressi nella ricerca medica e nelle applicazioni cliniche.
Titolo: Narrow window data-independent acquisition on the Orbitrap Astral Mass Spectrometer enables fast and deep coverage of the plasma glycoproteome
Estratto: Recently, a conceptually new mass analyzer was introduced by pairing a quadrupole Orbitrap mass spectrometer with an asymmetric track lossless (Astral) analyzer. This system provides >200-Hz MS/MS scanning speed, high resolving power and sensitivity, and low-ppm mass accuracy. This instrument allows a narrow-window data-independent (nDIA) strategy, improving sensitivity and reproducibility even when using very short LC gradients. Although this represents a new technical milestone in peptide-centric proteomics, this new system has not yet been evaluated for the analyses of very complex and clinically important proteomes, such as represented by the plasma glycoproteome. Here, we evaluated the Orbitrap Astral mass spectrometer for the analysis of the plasma glycoproteome, and pioneer a dedicated nDIA workflow, themed nGlycoDIA. With substantially adjusted parameters and varying collision energies, nGlycoDIA has clear benefits for plasma glycoproteomics. We tested our method both in glycopeptide enriched and crude plasma, leading to the identification of more than 3000 unique glycoPSMs from 181 glycoproteins, covering a dynamic range of 7 orders of magnitude in the enriched plasma sample in just 40 minutes. In addition, we detect for the first time several glycosylated cytokines that have a reported plasma concentration in the ng/L range. Furthermore, shortening the gradient to 10 min still allows the detection of almost 2500 unique glycoPSMs from enriched plasma, indicating that high-throughput indepth clinical plasma glycoproteomics may be within reach.
Autori: Albert J.R. Heck, S. Jager, M. Zeller, A. Pashkova, D. Schulte, E. Damoc, K. Reiding, A. A. Makarov
Ultimo aggiornamento: 2024-07-29 00:00:00
Lingua: English
URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.29.605591
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.29.605591.full.pdf
Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
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