Simple Science

Scienza all'avanguardia spiegata semplicemente

# La biologia # Genetica

Nuovi progressi nella ricerca sulla regolazione genica

I ricercatori sviluppano nuovi metodi per studiare la regolazione genica e la funzione degli enhancer.

Michael B. Eisen, J. Falo-Sanjuan, Y. Diaz-Tirado, M. A. Turner, J. Davis, C. Medrano, J. Haines, J. McKenna, A. Karshenas, H. G. Garcia

― 6 leggere min


Scoperte nella Scoperte nella Regolazione Genica profondi. promettono approfondimenti più Nuovi metodi per lo studio dei geni
Indice

La regolazione genica è un processo importante che controlla quando, dove e come i geni vengono espressi. Questo processo è vitale per lo sviluppo e il funzionamento corretto degli organismi viventi. Garantisce che le cellule si sviluppino correttamente, mantengano equilibrio e possano guarire quando danneggiate. Problemi con la regolazione genica possono portare a malattie, incluso il cancro.

Le sequenze di DNA corte chiamate potenziatori giocano un ruolo chiave nel controllo dell'Espressione genica. Questi potenziatori funzionano legandosi a proteine note come Fattori di Trascrizione. Il modo in cui questi fattori di trascrizione si attaccano ai potenziatori può influenzare quanto un gene viene espresso. I ricercatori stanno cercando di capire le regole specifiche che determinano come il numero e l'arrangiamento di questi siti di legame influenzino l'attività genica.

Per indagare queste regole, gli scienziati devono trovare con precisione i siti di legame nei potenziatori e testare come il cambiamento di questi siti influisca sull'espressione genica. Metodi recenti, in particolare gli Assay per reporter Massivamente paralleli (MPRA), consentono ai ricercatori di esaminare molte sequenze genetiche diverse contemporaneamente. Gli MPRA permettono agli scienziati di introdurre variazioni nel DNA all'interno di un ambiente controllato, consentendo loro di studiare gli effetti sull'espressione genica.

Sfide nell'applicare gli MPRA

Anche se gli MPRA sono uno strumento potente, hanno delle limitazioni. La maggior parte delle applicazioni è fattibile solo in cellule coltivate in laboratorio. Questa limitazione nasce perché gli MPRA dipendono da metodi che coinvolgono l'inserimento di nuovo DNA nelle cellule. Farlo in organismi multicellulari complessi, come animali e piante, è molto più difficile.

Ci sono stati alcuni successi nello studio di alcuni organismi, come le mosche della frutta o piante specifiche, ma i ricercatori non hanno metodi affidabili per applicare gli MPRA in modo ampio alla maggior parte degli organismi multicellulari.

Un'altra sfida con gli MPRA è la loro dipendenza da costrutti reporter specifici. Questi costrutti sono pezzi di DNA incorporati in plasmidi, piccole molecole di DNA circolari. Sfortunatamente, questi plasmidi non forniscono informazioni sull'ambiente nativo all'interno del genoma, come la presenza di proteine specifiche che modificano il funzionamento dei geni.

Nuova tecnologia per lo studio dei geni

Alla luce di queste sfide, i ricercatori hanno sviluppato una nuova tecnologia che consente uno studio più efficace dei potenziatori nel loro contesto naturale. Questa tecnologia si concentra sulla creazione di Mutazioni direttamente all'interno dell'organismo vivente, utilizzando la mosca della frutta Drosophila come sistema modello.

Utilizzando un metodo che introduce mutazioni casuali in sequenze di DNA specifiche, i ricercatori possono studiare gli effetti di queste mutazioni sull'attività dei potenziatori negli organismi. Questo nuovo approccio permette agli scienziati di creare una varietà di varianti di potenziatori nella linea germinale della mosca della frutta, le cellule che danno origine a ovuli e spermatozoi. Di conseguenza, ogni embrione prodotto da queste mosche modificate contiene un insieme unico di mutazioni all'interno delle sequenze dei potenziatori che possono essere testate per i loro effetti sull'espressione genica.

Tecniche per introdurre mutazioni

Per creare queste mutazioni, i ricercatori hanno testato diversi strumenti di editing del DNA, inclusi editor di basi e polimerasi del DNA soggette a errori. Un metodo particolarmente efficace ha coinvolto una serie di enzimi che deaminano basi di DNA specifiche. Questo metodo porta a cambiamenti nel DNA convertendo una base in un'altra.

Attraverso ottimizzazione e test in Drosophila, i ricercatori hanno scoperto che questi enzimi potevano raggiungere un alto livello di mutagenesi nel genoma della mosca. Hanno quindi perfezionato il design delle RNA guida che mirano alle regioni di interesse all'interno del genoma, consentendo mutazioni ancora più precise.

Performance del sistema di mutagenesi

I primi esperimenti hanno mostrato che il nuovo sistema di mutagenesi sviluppato funzionava bene in colture cellulari. Tuttavia, quando applicato a embrioni vivi di Drosophila, i tassi di mutazione erano significativamente più bassi. Questa discrepanza ha evidenziato la necessità di ulteriori ottimizzazioni per migliorare l'efficienza della mutagenesi negli organismi viventi.

I ricercatori hanno sperimentato diversi promotori per controllare l'espressione degli strumenti di mutagenesi. Hanno anche esplorato il tempismo e le condizioni di espressione per trovare combinazioni che massimizzassero il numero di mutazioni generate.

Risultati degli esperimenti

I ricercatori hanno scoperto che un enzima specifico derivato dalla lampreda di mare era particolarmente efficace nel generare mutazioni sia in coltura cellulare che in Drosophila viva. Questo enzima ha portato a una percentuale elevata di mutazioni nelle regioni mirate del DNA.

Utilizzando un insieme di RNA guida, gli scienziati potevano mutare un'ampia area della sequenza di DNA contemporaneamente. La capacità di esprimere più RNA guida simultaneamente ha consentito loro di mirare a sequenze più lunghe, portando a una distribuzione più uniforme delle mutazioni.

Fattori che influenzano i tassi di mutazione

Diversi fattori hanno influenzato i tassi di mutazione e i modelli di mutazioni osservati negli esperimenti. Ad esempio, la lunghezza delle RNA guida si è rivelata importante; RNA guida più lunghe hanno mostrato una maggiore efficienza e una gamma più ampia di attività di mutazione.

I ricercatori hanno anche notato che l'efficacia degli strumenti di mutagenesi variava a seconda del tipo specifico di enzima utilizzato. Mentre alcuni enzimi funzionavano bene in cellule coltivate in laboratorio, non erano altrettanto efficaci negli organismi vivi.

Direzioni future per la ricerca

Date le successi e le sfide incontrate, gli scienziati sono entusiasti del potenziale futuro di questa tecnologia. La possibilità di introdurre un'ampia gamma di mutazioni direttamente negli organismi viventi apre nuove strade per studiare la regolazione genica. In particolare, i ricercatori sperano di utilizzare questa tecnologia per esaminare i potenziatori più da vicino nei loro contesti naturali, consentendo una comprensione più profonda di come queste sequenze funzionino negli organismi multicellulari.

Inoltre, gli scienziati pianificano di esplorare come tecniche simili possano essere adattate ad altre specie, il che potrebbe ampliare le applicazioni di questo lavoro oltre le mosche della frutta. Combinando questa tecnologia di mutagenesi con metodi di sequenziamento avanzati, i ricercatori prevedono di ottenere maggiori informazioni sulle complesse reti regolatorie che controllano l'espressione genica.

Conclusione

Lo sviluppo di nuove tecnologie per studiare la regolazione genica segna un passo importante avanti nella genetica. Permettendo ai ricercatori di creare e analizzare una varietà di mutazioni in tempo reale, gli scienziati possono approfondire i meccanismi dell'espressione e della regolazione genica. Questa conoscenza è fondamentale per comprendere la salute e le malattie e per sviluppare nuove strategie terapeutiche per una serie di condizioni mediche. Man mano che le tecniche continuano ad evolversi, il potenziale di questi strumenti per influenzare la genetica e la biologia è immenso.

Fonte originale

Titolo: Targeted mutagenesis of specific genomic DNA sequences in animals for the in vivo generation of variant libraries

Estratto: Understanding how the number, placement and affinity of transcription factor binding sites dictates gene regulatory programs remains a major unsolved challenge in biology, particularly in the context of multicellular organisms. To uncover these rules, it is first necessary to find the binding sites within a regulatory region with high precision, and then to systematically modulate this binding site arrangement while simultaneously measuring the effect of this modulation on output gene expression. Massively parallel reporter assays (MPRAs), where the gene expression stemming from 10,000s of in vitro-generated regulatory sequences is measured, have made this feat possible in high-throughput in single cells in culture. However, because of lack of technologies to incorporate DNA libraries, MPRAs are limited in whole organisms. To enable MPRAs in multicellular organisms, we generated tools to create a high degree of mutagenesis in specific genomic loci in vivo using base editing. Targeting GFP integrated in genome of Drosophila cell culture and whole animals as a case study, we show that the base editor AIDevoCDA1 stemming from sea lamprey fused to nCas9 is highly mutagenic. Surprisingly, longer gRNAs increase mutation efficiency and expand the mutating window, which can allow the introduction of mutations in previously untargetable sequences. Finally, we demonstrate arrays of >20 gRNAs that can efficiently introduce mutations along a 200bp sequence, making it a promising tool to test enhancer function in vivo in a high throughput manner.

Autori: Michael B. Eisen, J. Falo-Sanjuan, Y. Diaz-Tirado, M. A. Turner, J. Davis, C. Medrano, J. Haines, J. McKenna, A. Karshenas, H. G. Garcia

Ultimo aggiornamento: Dec 22, 2024

Lingua: English

URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.10.598328

Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.10.598328.full.pdf

Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/

Modifiche: Questa sintesi è stata creata con l'assistenza di AI e potrebbe presentare delle imprecisioni. Per informazioni accurate, consultare i documenti originali collegati qui.

Si ringrazia biorxiv per l'utilizzo della sua interoperabilità ad accesso aperto.

Articoli simili