Nouvelle méthode pour conserver des échantillons de microbiome intestinal
Des tests ont été faits sur le gel de silice pour la conservation des échantillons de selles à température ambiante.
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Table des matières
Le Microbiome intestinal joue un rôle crucial dans notre santé. Il est composé de divers microorganismes vivant dans nos intestins, et ils produisent des substances qui impactent notre bien-être global. Des problèmes comme les maladies intestinales, le diabète et les problèmes cardiaques peuvent être liés à l'état de notre microbiome intestinal. Donc, il est important de trouver des moyens efficaces pour l'étudier.
Un aspect clé de l'examen du microbiome intestinal est comment on collecte et stocke les échantillons. La méthode habituelle implique de congeler les Échantillons de selles juste après la collecte. Ça, c'est parce que la composition des microbes dans les selles peut changer rapidement si laissée à température ambiante. Cependant, congeler nécessite un équipement spécial, ce qui n'est pas toujours pratique, surtout pour la collecte d'échantillons dans des endroits comme les jungles. Du coup, les chercheurs cherchent des méthodes pour stocker les échantillons de selles sans avoir besoin de congélation.
Méthodes de Collecte Actuelles
Divers kits commerciaux ont été développés pour stocker les échantillons de selles à température ambiante. Certains ont montré des promesses pour garder le microbiome stable, mais il n’y a pas de méthode qui protège à la fois les microbes et les substances qu'ils produisent (Métabolites) en même temps. Beaucoup de kits actuels contiennent aussi de fortes quantités de sel, ce qui les rend dangereux à utiliser en dehors d’un laboratoire et complique la mesure des métabolites.
Une méthode traditionnelle de Préservation est le Séchage. Cette méthode réduit la teneur en eau, ce qui peut aider à stopper la croissance des microbes nuisibles. Bien que certaines bactéries puissent survivre dans des conditions sèches, la plupart ne peuvent pas prospérer, ce qui rend le séchage une méthode fiable. Dans le passé, les biologistes sur le terrain ont utilisé le séchage pour les échantillons d'ADN, et des études ont montré que cette méthode est efficace.
Cependant, on s'inquiète que le séchage pourrait entraîner la perte de certains métabolites volatils importants. Ces métabolites, y compris les acides gras à chaîne courte produits par les microbes intestinaux, sont essentiels pour divers aspects de la santé. Pourtant, certaines recherches ont indiqué que les concentrations de ces métabolites peuvent rester stables même après un lyophilisation, suggérant que le séchage pourrait aussi fonctionner pour les échantillons de selles.
But de l'Étude
Cette étude visait à examiner une méthode de préservation des échantillons de selles en utilisant du gel de silice, un agent de séchage courant. Le but était de voir si cette méthode pouvait efficacement maintenir à la fois les profils du microbiome et du métabolome à température ambiante.
Méthodes
Pour tester différentes méthodes de préservation des selles, différentes techniques de stockage ont été appliquées. Voici les méthodes clés utilisées dans l'étude :
- Méthode de Contrôle : Les échantillons de selles étaient immédiatement congelés avec de l'azote liquide après la collecte.
- Contrôle à Température Ambiante : Les échantillons étaient stockés à température ambiante sans aucune préservation.
- Méthode FTA Card : Les échantillons étaient placés sur une carte FTA pour sécher avant le stockage à température ambiante.
- Méthode RNAlater : Les échantillons étaient stockés dans une solution qui stabilise l'ARN à température ambiante.
- Méthode Gel de Silice : Les échantillons étaient placés entre des plaques de gel de silice pour absorber l'humidité et ensuite stockés.
Des selles ont été collectées auprès de dix participants, en s'assurant qu'ils étaient en bonne santé et ne prenaient pas de médicaments spécifiques. Les échantillons étaient stockés pendant sept jours, et certains ont été testés après quatorze jours pour une préservation à plus long terme.
Extraction d'Échantillons
La prochaine étape consistait à extraire l'ADN et les métabolites des échantillons. Les échantillons de contrôle et à température ambiante ont été séchés à l'aide d'une machine spéciale, puis les selles ont été mélangées avec des solutions pour aider à isoler l'ADN et les métabolites. Après extraction, le séquençage de l'ADN et la mesure des métabolites ont été réalisés pour analyser les échantillons en profondeur.
Résultats
Analyse Qualitative
La première analyse s'est concentrée sur la capacité des différentes méthodes à détecter efficacement les bactéries et les métabolites dans les échantillons de selles. Au total, 241 types de bactéries, 458 voies métaboliques et 316 métabolites ont été identifiés. Comparer ces résultats avec la méthode de contrôle a montré que la plupart des techniques préservaient un bon nombre de microbes et de voies. Cependant, la méthode FTA card n'a pas conservé beaucoup de métabolites.
Parmi toutes les méthodes, la technique du gel de silice avait le plus grand nombre d'éléments préservés, suggérant que c'était l'option la plus efficace.
Analyse Quantitative
Ensuite, les chercheurs ont examiné à quel point les résultats étaient précis et cohérents entre les différentes méthodes. La précision indique à quel point les mesures sont proches les unes des autres, tandis que l'exactitude mesure à quel point les résultats sont proches des valeurs réelles.
Pour les profils microbiens et métaboliques, la méthode du gel de silice a montré une précision et une exactitude élevées par rapport aux autres méthodes. La méthode FTA card avait une précision plus faible, notamment pour les métabolites, ce qui indiquait qu'elle pourrait ne pas être adaptée à la préservation des données métabolomiques.
Comparaisons des Méthodes de Stockage
Les chercheurs ont également examiné comment les différentes méthodes affectaient le nombre de microbes, de voies et de métabolites spécifiques. Bien que des résultats variés aient été observés entre les méthodes, certaines différences significatives ont été notées, notamment avec les méthodes FTA card et RNAlater, qui n'ont pas donné de bons résultats.
En comparant les classements, la méthode du gel de silice a maintenu une forte corrélation avec la méthode de contrôle pour divers microbes et métabolites. Cela suggère que l'utilisation du gel de silice pour la préservation des échantillons pourrait donner des résultats fiables et comparables dans de futures études.
Limitations
Bien que cette étude ait mis en avant l'efficacité de la méthode du gel de silice, elle avait aussi des limites. L'analyse était complexe, car elle prenait en compte de nombreuses variables différentes, ce qui pouvait entraîner des problèmes avec les comparaisons multiples. De plus, tous les participants étaient en bonne santé, donc plus de recherches sont nécessaires pour voir si ces méthodes fonctionnent pour les personnes malades.
Conclusion
Le séchage des échantillons de selles à l'aide de gel de silice peut permettre de préserver efficacement le microbiome intestinal et les métabolites. Cette technique offre une alternative pratique à la congélation, la rendant plus accessible pour la recherche. D'autres études avec des groupes plus larges aideront à confirmer ces résultats et à explorer les applications pour d'autres populations.
Titre: Optimized sampling method for fecal microbiome and metabolome preservation under room temperature
Résumé: BackgroundThe relationship among the human gut microbiome, microbially produced metabolites, and health outcomes remains of great interest. To decrease participant burden, room-temperature storage methods for fecal samples have become increasingly important. However, kits for storing the fecal microbiome and metabolome have not been well explored. We hypothesized that storing fecal samples by drying them with silica gel may be suitable. ObjectivesThe objective was to evaluate the performance of storage at room temperature by drying feces for subsequent examination of the microbiome, microbial pathways, and the metabolome. MethodsFeces from ten healthy adults (6 male and 4 female) were sampled and immediately processed, as controls, and stored at room temperature in an incubator, on an FTA card, in RNAlater, or dried by silica gel. Storage at room temperature continued for 7 days. Drying by the silica gel method was assessed for 14 days. The fecal microbiome was assessed by sequencing the bacterial 16S ribosomal RNA-encoding gene (V1-V2 region), fecal microbial pathway profiles were analyzed by whole-genome shotgun metagenomics, and fecal metabolome profiles were analyzed using capillary electrophoresis time-of-flight mass spectrometry (CE-TOFMS). ResultsQualitative and {beta}-diversity analyses of the microbiome, microbial pathways, and the metabolome showed that drying by silica gel were closest to those immediately after processing. When focusing on the abundances of individual microbes, microbial pathways, and metabolites, some were found to be significantly different. However, the intra-method ranking of individual items showed that 100%, 87-97%, and 63-76% of microbes, microbial pathways, and metabolites, respectively, were significantly correlated between silica gel preserving and immediately processing method. ConclusionsThe results showed that fecal sample drying could be effectively used for the preservation of the fecal microbiome and metabolome.
Auteurs: Shinji Fukuda, T. Nomaguchi, Y. Yamauchi, Y. Nishimoto, Y. Togashi, M. Ito, F. Salim, K. Fujisawa, S. Murakami, T. Yamada
Dernière mise à jour: 2023-05-11 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.medrxiv.org/content/10.1101/2023.05.08.23289643
Source PDF: https://www.medrxiv.org/content/10.1101/2023.05.08.23289643.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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