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# Biologie# Biochimie

Avancées dans la recherche sur la ubiquitination avec l'Ub-POD

Une nouvelle méthode pour étudier les ligases E3 et leurs interactions avec les substrats.

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Table des matières

L'Ubiquitination, c'est un processus où une petite protéine appelée ubiquitine se fixe à d'autres protéines. Cette fixation peut signaler que la protéine cible doit être décomposée, modifiée ou envoyée à d'autres parties de la cellule. L'ubiquitination est super importante pour plein de trucs cellulaires, comme la façon dont les cellules réagissent au stress, réparent l'ADN, et contrôlent le cycle cellulaire.

Le Processus d'Ubiquitination

Le processus d'ubiquitination implique trois types principaux d'enzymes : E1, E2, et E3.

  1. Enzymes E1 (Enzymes Activatrices d'Ubiquitine) : Ces enzymes activent l'ubiquitine en se l'attachant à elles-mêmes en utilisant de l'énergie de l'ATP.

  2. Enzymes E2 (Enzymes Conjuguantes d'Ubiquitine) : Après activation, E1 transfère l'ubiquitine à E2. Les enzymes E2 jouent un rôle dans le transfert de l'ubiquitine à la protéine cible.

  3. Enzymes E3 (Ligases d'Ubiquitine) : Les enzymes E3 sont essentielles parce qu'elles aident à déterminer quelle protéine précise va recevoir l'ubiquitine. Elles se lient à la fois à l'enzyme E2 qui transporte l'ubiquitine et à la protéine cible, facilitant le transfert de l'ubiquitine.

Tout ce processus, c'est un peu comme une course de relais. E1 commence en activant l'ubiquitine, E2 la transporte, et E3 s'assure qu'elle arrive à la bonne ligne d'arrivée.

Importance des Ligases E3

Les ligases E3 sont cruciales car elles apportent de la spécificité dans le processus d'ubiquitination. Il y a plus de 600 ligases E3 différentes chez les humains, et elles peuvent cibler des milliers de protéines différentes. Cette diversité permet à la cellule de gérer plein de processus différents efficacement.

Les ligases E3 peuvent être divisées en plusieurs familles selon leur structure, avec deux groupes principaux étant les types RING et U-box. Les ligases E3 RING sont les plus courantes et facilitent directement le transfert de l'ubiquitine à la protéine cible. Les ligases U-box partagent une fonction similaire mais ont une structure différente.

Identifier les Bons Substrats

Pour savoir comment les ligases E3 fonctionnent dans la cellule, il est crucial d'identifier leurs substrats. Les méthodes traditionnelles pour trouver ces interactions comprennent des techniques qui peinent souvent avec la nature transitoire des relations E3-substrat. Pour y remédier, des méthodes plus récentes ont été développées pour améliorer l'identification des substrats.

Une approche efficace consiste à utiliser des anticorps qui peuvent reconnaître les résidus laissés sur les protéines après qu'elles soient ubiquitinées. Par exemple, un fragment spécifique d'ubiquitine qui apparaît lorsque les protéines sont décomposées peut être ciblé pour analyse. Une autre méthode utilise des fusions d'ubiquitine avec des ligases E3 pour aider à "piéger" les substrats, permettant aux chercheurs de tirer tout le complexe pour l'étude.

Une Nouvelle Méthode : Ub-POD

Dans des recherches récentes, une nouvelle technique appelée Ub-POD (Ubiquitin Proximity-Dependent labeling) a été développée pour étiqueter et identifier les substrats des ligases E3 directement dans les cellules. Avec Ub-POD, les chercheurs peuvent taguer les ligases E3 de manière à ce qu'elles interagissent avec les substrats pendant le processus d'ubiquitination.

Comment Fonctionne Ub-POD

La méthode Ub-POD tire parti du fait que les ligases E3 forment une connexion stable avec leurs substrats. Une enzyme spéciale appelée BirA est utilisée dans ce processus :

  1. BirA est accrochée à la ligase E3.

  2. L'ubiquitine est modifiée avec un petit tag peptide (Acceptor Peptide, AP).

  3. Quand la ligase E3 se lie à l'ubiquitine et au substrat, BirA peut étiqueter l'ubiquitine liée à l'AP avec de la Biotine.

  4. Les substrats biotinylés peuvent alors être extraits du mélange cellulaire à l'aide de billes de streptavidine.

  5. Enfin, les chercheurs analysent ces protéines biotinylées pour identifier les cibles de la ligase E3.

Cette méthode réduit le bruit de fond souvent observé avec d'autres techniques et permet une manière efficace de visualiser où l'ubiquitination se produit dans la cellule.

Tester Ub-POD avec des Ligases E3

Pour valider l'approche Ub-POD, les chercheurs l'ont appliquée à deux ligases E3 différentes : RAD18 et TRAF6.

RAD18 et Réparation de l'ADN

RAD18 est impliqué dans la réparation de l'ADN lorsqu'il est endommagé. Il fonctionne en ajoutant de l'ubiquitine à une protéine appelée PCNA, qui joue un rôle dans la réplication de l'ADN. En utilisant Ub-POD, les chercheurs ont découvert que RAD18 étiquette efficacement PCNA dans les cellules après que celles-ci aient été exposées à la lumière UV, qui cause des dommages à l'ADN.

Grace à cette méthode, ils ont pu suivre comment RAD18 modifie PCNA et éventuellement identifier d'autres substrats que RAD18 cible dans différentes conditions.

TRAF6 et Réponses Immunitaires

TRAF6 est une autre ligase E3 qui joue un rôle significatif dans les réponses immunitaires. Les chercheurs ont utilisé la méthode Ub-POD pour étudier TRAF6 et ont découvert qu'elle pouvait identifier une gamme de protéines impliquées dans les voies de signalisation liées à l'inflammation et à la survie cellulaire.

Ce processus leur a permis de confirmer des substrats de TRAF6 déjà connus et a également abouti à la découverte de nouveaux substrats potentiels liés aux réponses immunitaires.

Application à d'Autres Ligases : CHIP

Une autre ligase E3, connue sous le nom de CHIP, est vitale pour maintenir la qualité des protéines dans la cellule. Comme RAD18 et TRAF6, les chercheurs ont appliqué la méthode Ub-POD à CHIP pour identifier ses substrats.

En modifiant l'approche pour inclure CHIP avec différents linkers et conditions, les chercheurs ont trouvé non seulement des substrats connus de CHIP mais aussi de nouveaux cibles potentielles. Cette adaptabilité de la méthode Ub-POD montre sa force pour identifier divers substrats de ligases E3.

Avantages de Ub-POD par Rapport à d'Autres Méthodes

Il y a plusieurs raisons pour lesquelles la méthode Ub-POD se démarque lorsqu'il s'agit d'identifier les substrats des ligases d'ubiquitine :

  1. Spécificité : Contrairement aux méthodes d'étiquetage de proximité traditionnelles qui peuvent taguer beaucoup de protéines non liées, Ub-POD est conçu pour étiqueter spécifiquement les protéines qui sont directement impliquées dans le processus d'ubiquitination.

  2. Contrôle sur les Conditions : La méthode permet aux chercheurs de contrôler des facteurs comme le timing de l'ajout de biotine et la durée d'exposition à différentes conditions, aidant à optimiser l'identification des substrats pour diverses ligases.

  3. Polyvalence : Ub-POD peut être appliqué à diverses ligases E3, y compris celles qui ont des structures et des fonctionnalités différentes. Cette nature universelle en fait un outil précieux dans le domaine de la biologie.

  4. Visualisation : La méthode facilite également la visualisation de l'endroit où l'ubiquitination se produit dans la cellule, fournissant un aperçu des fonctions cellulaires de diverses ligases E3.

Conclusion

L'ubiquitination est un processus cellulaire essentiel qui influence une large gamme de fonctions. Comprendre comment les ligases E3 identifient et modifient leurs substrats est crucial pour déchiffrer leurs rôles dans la santé et la maladie. La méthode Ub-POD offre un moyen nouveau et puissant d'étudier ces interactions, améliorant notre compréhension de la protéostasie, de la réparation de l'ADN, des réponses immunitaires, et plus encore.

Les avancées dans ce domaine pourraient mener à de meilleures perspectives concernant des maladies liées à des erreurs de repliement des protéines, des déficiences de réparation de l'ADN, et des dysfonctionnements immunitaires, ce qui pourrait potentiellement guider des stratégies thérapeutiques à l'avenir.

Source originale

Titre: A ubiquitin-specific, proximity-based labeling approach for the identification of ubiquitin ligase substrates

Résumé: Ubiquitination of proteins is central to protein homeostasis and other cellular processes including DNA repair, vesicular transport, cell-division etc. The process of ubiquitination is conserved from yeast to humans and is carried out by the sequential action of three enzymes: E1, E2 and E3. There are an estimated >600 E3 ligases in humans that execute ubiquitination of specific target proteins in a spatio-temporal manner to elicit desired signaling effects. Here, we developed a ubiquitin-specific proximity-based labeling method to selectively biotinylate substrates of a given ubiquitin ligase. Our method exploits the proximity and the relative orientation of the E3-ligase catalytic domain with respect to ubiquitin observed in the enzymatic intermediate-state structures of E3-E2[~]Ub. By fusing the biotin ligase BirA and an Avi-tag variant to the candidate E3 ligase and ubiquitin, respectively, we were able to specifically enrich bona fide substrates and potential new substrates of a ligase using a one-step streptavidin pulldown under denaturing conditions. As proof-of-principle, we applied our method, which we named Ub-POD, to the RING E3 ligase RAD18. RAD18 ubiquitinates DNA-sliding clamp PCNA upon UV-induced DNA damage. We identified PCNA and several other critical players in the DNA damage repair pathway in a single RAD18 Ub-POD experiment. We went on to validate DNA replicase POLE as a possible new substrate of RAD18. Through RAD18 Ub-POD, we were also able to pin down the cellular localization of RAD18-mediated ubiquitination to the damaged DNA nuclear puncta using streptavidin immunofluorescence. Furthermore, we applied Ub-POD to TRAF6, another RING ubiquitin ligase involved in NF-{kappa}B signaling and successfully identified known and potentially new TRAF6 substrates. Finally, we adapted our method to the U-box-type E3 ubiquitin ligase CHIP to demonstrate that we can identify substrates of two major classes of mammalian ubiquitin ligases. We anticipate that our method and principle could be widely adapted to all classes of ubiquitin ligases to identify substrates and localize the cellular site(s) of ubiquitination.

Auteurs: Sagar Bhogaraju, U. Mukhopadhyay, S. Levantovsky, S. Gharbi, F. Stein, C. Behrends

Dernière mise à jour: 2024-02-29 00:00:00

Langue: English

Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.09.04.556194

Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.09.04.556194.full.pdf

Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.

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