ReX : Transformer l'analyse de la dynamique des protéines
Une nouvelle méthode améliore l'analyse de la structure des protéines grâce à la HDX-MS.
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Table des matières
- C'est quoi HDX-MS ?
- Facteurs influençant la dynamique des protéines
- Applications de HDX-MS
- Défis avec HDX-MS
- Passage aux données au niveau des résidus
- Introduction de ReX
- Comparaison de ReX avec d'autres méthodes
- Caractéristiques extraites de ReX
- Analyse des caractéristiques structurelles
- Analyse différentielle dans HDX-MS
- Études de cas : BRD4 et LXRα
- Quantification de l'incertitude dans l'analyse
- Conclusion
- Source originale
- Liens de référence
Les Protéines sont essentielles pour plein de fonctions chez les organismes vivants. Elles ont des formes et des structures uniques qui déterminent comment elles fonctionnent. Savoir comment les protéines changent de forme quand elles interagissent avec d'autres molécules aide les scientifiques à comprendre leurs rôles.
C'est quoi HDX-MS ?
Une méthode populaire pour étudier ces changements s'appelle la spectrométrie de masse par échange hydrogène-déutérium (HDX-MS). Cette technique suit comment les atomes d'hydrogène dans les protéines sont échangés avec du déutérium, une version plus lourde de l'hydrogène, quand les protéines entrent en contact avec une solution spécifique. En mesurant la rapidité de cet échange, les chercheurs peuvent en apprendre plus sur la structure de la protéine et sur comment elle change pendant les interactions.
Facteurs influençant la dynamique des protéines
Plusieurs facteurs influencent comment les protéines se déplient et se replient. Un facteur clé est la structure de la protéine, y compris sa structure secondaire (comme les alpha-hélices et les feuillets bêta) et l'accessibilité des différentes parties de la protéine à la solution environnante. Les chercheurs ont établi des théories pour expliquer comment les protéines se plient et se déplient en fonction de ces dynamiques.
Applications de HDX-MS
HDX-MS a pas mal d'applications. Par exemple, ça aide les scientifiques à comprendre comment les anticorps interagissent avec des antigènes en identifiant des sites de liaison spécifiques. Ça peut aussi être utilisé pour voir comment des petites molécules stabilisent les protéines ou comment des mutations dans des acides aminés influencent la fonction des protéines. De plus, HDX-MS joue un rôle dans la conception de vaccins.
Défis avec HDX-MS
La plupart des études utilisant HDX-MS suivent une approche ascendante. Dans cette stratégie, les protéines sont décomposées en morceaux plus petits à l'aide d'enzymes, et les taux d'échange sont mesurés au niveau des Peptides. Bien que cette méthode donne des infos utiles, elle a ses limites :
Redondance des données : Quand il y a des peptides qui se chevauchent, il peut être difficile de combiner les infos de différentes sources clairement.
Biais de longueur : Les peptides plus longs peuvent montrer des changements cohérents, tandis que les plus courts peuvent afficher des résultats plus variables. Ça complique l'interprétation.
Nature temporelle : Les données collectées au fil du temps doivent être analysées tout en gardant à l'esprit comment les changements sont corrélés sur la longueur de la protéine.
Passage aux données au niveau des résidus
Pour adresser certains de ces défis, les chercheurs ont proposé des méthodes pour projeter les données du niveau des peptides au niveau des résidus. Plusieurs stratégies ont été suggérées, certaines se concentrant sur l'average des infos le long de la séquence, tandis que d'autres impliquent la création de modèles pour minimiser les divergences entre les données observées et attendues.
Introduction de ReX
En réponse à ces défis, une nouvelle méthode appelée ReX a été développée. Cette méthode combine différentes stratégies pour donner une vue plus claire du comportement des protéines au niveau des résidus. ReX utilise un modèle statistique qui prend en compte comment l'absorption de déutérium varie selon les résidus et permet aux chercheurs d'analyser mieux les données des peptides qui se chevauchent.
ReX est flexible et peut traiter plein de types d'états de protéines, que ce soit avec des petites molécules, des mutations ou des complexes avec d'autres protéines. Bien que ça marche mieux avec plusieurs points de données et répétitions, ça peut aussi donner des résultats informatifs avec moins de données.
Comparaison de ReX avec d'autres méthodes
Pour évaluer les performances de ReX, les chercheurs ont réalisé une expérience de référence avec une protéine appelée Cytochrome C. Ils ont comparé les résultats de ReX avec d'autres méthodes pour déterminer les valeurs d'absorption au niveau des résidus. Ce processus de benchmarking impliquait de tester différentes approches et de mesurer la précision de leurs prédictions.
Les résultats ont montré que ReX produisait souvent de meilleurs résultats, respectant les contraintes physiques tout en modélisant les données avec succès. Il se démarquait par sa capacité à produire des valeurs d'absorption de déutérium cohérentes et fiables, même en tenant compte des variations dans les longueurs des peptides.
Caractéristiques extraites de ReX
Une fois que la précision de ReX a été établie, l'étape suivante était d'extraire des caractéristiques utiles du modèle. Une limitation significative dans les précédentes études HDX-MS était le manque de mesures de résolution des données. ReX fournit une échelle pour évaluer à quel point les données sont bien modélisées, aidant les chercheurs à comprendre où les données s'ajustent bien et où elles peuvent être moins fiables.
Analyse des caractéristiques structurelles
Avec ReX, les chercheurs peuvent aussi examiner des caractéristiques structurelles des protéines comme l'accessibilité aux solvants. Par exemple, ils ont trouvé des corrélations entre les données HDX et les annotations structurelles, menant à des idées sur comment les caractéristiques structurelles influencent la dynamique du comportement des protéines.
Dans une étude impliquant des protéines comme l'Alpha-Lactalbumine et l'Enolase, les chercheurs ont associé des caractéristiques structurelles à des changements dans l'échange de déutérium. Ils ont noté que les régions moins accessibles des protéines montrent généralement moins de changements, indiquant une structure plus stable, tandis que les régions plus exposées aux solvants avaient des taux d'échange plus élevés.
Analyse différentielle dans HDX-MS
Les chercheurs ont aussi exploré comment ReX pouvait améliorer la compréhension des protéines dans des contextes différentiels. Cela signifie comparer deux états différents d'une protéine pour déterminer comment les interactions affectent sa structure. Par exemple, ils ont simulé comment l'absorption de déutérium pourrait changer sous différentes conditions et ont examiné les implications de ces changements sur la Flexibilité des protéines.
Études de cas : BRD4 et LXRα
Deux études de cas ont été réalisées pour démontrer davantage les capacités de ReX. Dans la première étude, les chercheurs ont examiné les bromodomaines de la protéine BRD4 lorsqu'elle est liée à un inhibiteur de petite molécule, I-BET151. Grâce à cette analyse, ils ont identifié comment la liaison affectait la flexibilité de différentes régions au sein des bromodomaines. Les résultats ont indiqué qu'un domaine était plus flexible que l'autre, éclairant comment la structure de la protéine pouvait affecter sa fonction.
La seconde étude de cas impliquait LXRα, une protéine qui régule les niveaux de cholestérol et est une cible pour certains médicaments. Les chercheurs ont utilisé ReX pour analyser comment diverses molécules induisaient des changements structurels dans LXRα. Grâce à cette analyse, ils ont lié les changements conformationnels aux propriétés pharmacologiques de ces molécules, fournissant des idées sur lesquelles les composés pourraient être plus efficaces pour gérer le cholestérol.
Quantification de l'incertitude dans l'analyse
Une des forces de ReX est sa capacité à quantifier l'incertitude dans l'analyse. En générant plusieurs échantillons à partir de la distribution postérieure, les chercheurs peuvent visualiser la variabilité potentielle dans leurs résultats. Cet aspect est crucial pour assurer la fiabilité des découvertes, surtout dans le contexte du développement de médicaments où la confiance statistique est primordiale.
Conclusion
HDX-MS s'avère être une technique efficace pour étudier le comportement des protéines, aidant les chercheurs à découvrir comment les protéines changent de forme et fonctionnent. Bien que des défis existent dans l'interprétation des données, des méthodes comme ReX offrent une approche puissante pour améliorer la compréhension de la dynamique des protéines au niveau des résidus. En se concentrant sur des modèles statistiques et la quantification de l'incertitude, ReX donne aux chercheurs une voie pour améliorer la précision de l'analyse structurelle et contribuer finalement aux avancées dans le développement de médicaments et les applications thérapeutiques.
Avec une recherche et une application continues, ReX et des méthodes similaires joueront sans aucun doute un rôle clé dans le futur des études sur les protéines, offrant des aperçus plus profonds sur les complexes subtilités des systèmes biologiques.
Titre: Inferring residue level hydrogen deuterium exchange with ReX
Résumé: Hydrogen-Deuterium Exchange Mass-Spectrometry (HDX-MS) has emerged as a powerful technique to explore the conformational dynamics of proteins and protein complexes in solution. The bottom-up approach to MS uses peptides to represent an average of residues, leading to reduced resolution of deuterium exchange and complicates the interpretation of the data. Here, we introduce ReX, a method to infer residue-level uptake patterns leveraging the overlap in peptides, the temporal component of the data and the correlation along the sequence dimension. This approach infers statistical significance for individual residues by treating HDX-MS as a multiple change-point problem. By fitting our model in a Bayesian non-parametric framework, we perform parameter number inference, differential HDX confidence assessments, and uncertainty estimation for temporal kinetics. Benchmarking against existing methods using a three-way proteolytic digestion experiment shows our methods superior performance at predicting unseen HDX data. Moreover, it aligns HDX-MS with the reporting standards of other structural methods by providing global and local resolution metrics. Using ReX, we analyze the differential flexibility of BRD4s two Bromodomains in the presence of I-BET151 and quantify the conformational variations induced by a panel of seventeen small molecules on LXR. Our analysis reveals distinct residue-level HDX signatures for ligands with varied functional outcomes, highlighting the potential of this characterisation to inform mode of action analysis.
Auteurs: Oliver Crook, N. Gittens, C.-w. Chung, C. Deane
Dernière mise à jour: 2024-04-13 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.04.12.589190
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.04.12.589190.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.
Merci à biorxiv pour l'utilisation de son interopérabilité en libre accès.
Liens de référence
- https://github.com/ococrook/RexMS
- https://ococrook.github.io/RexMS/articles/ReX.html
- https://ococrook.github.io/RexMS/articles/DifferentialRexMS.html
- https://ococrook.github.io/RexMS/articles/ConformationalSignatureAnalysis.html
- https://olivercrook.shinyapps.io/BRD4-ReX/
- https://olivercrook.shinyapps.io/ConformationalSignatureAnalysis/
- https://github.com/ococrook/RexMS.Documentation
- https://ococrook.github.io/RexMS/