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La promesse de la cytométrie de flux magnétique dans les tests médicaux

La cytométrie de flux magnétique transforme les tests sur place avec une analyse cellulaire efficace.

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Les tests de point de soin (POC) désignent des tests médicaux réalisés sur ou près du lieu de soin du patient, plutôt que dans un labo centralisé. Ces tests ont pris beaucoup d'importance ces dernières années, surtout à cause de la pandémie de COVID-19, qui a mis en avant le besoin de tests rapides en dehors des milieux traditionnels. Les tests POC fournissent des résultats rapides, ce qui est crucial pour orienter les décisions de traitement.

Différentes technologies sont utilisées pour les tests POC, y compris des tests qui peuvent détecter des substances dans un échantillon en fonction des changements de couleur, de fluorescence ou de signaux électriques. Un cadre appelé REASSURED a été proposé pour garantir que les tests POC répondent à des caractéristiques essentielles : connectivité en temps réel, facilité de Collecte d'échantillons, accessibilité, sensibilité, spécificité, convivialité, performance rapide et robuste, fonctionnement sans équipement, et possibilité de livraison aux utilisateurs finaux.

Cytométrie de flux optique et ses limites

La cytométrie de flux optique (OFC) est l'une des principales méthodes utilisées pour analyser les cellules. Elle offre une sensibilité élevée et la capacité d'analyser plusieurs substances en même temps. L'OFC est souvent utilisée pour diagnostiquer des maladies comme le VIH, surveiller les thérapies cellulaires, détecter des virus et même étudier le cancer.

Cependant, l'OFC nécessite un équipement sophistiqué qui se trouve généralement dans des laboratoires centraux. Cette configuration n'est pas pratique pour les tests POC en raison de facteurs comme les coûts élevés, le volume et la nécessité d'une manipulation précise des échantillons. De plus, la préparation des échantillons nécessaire pour l'OFC peut être compliquée et longue.

Cytométrie de flux magnétique : Une nouvelle approche

Pour faire face aux complexités associées aux systèmes optiques, une nouvelle méthode appelée cytométrie de flux magnétique (MFC) a émergé. Dans la MFC, des Nanoparticules magnétiques (MNP) sont utilisées au lieu de marqueurs fluorescents pour le marquage cellulaire. Cette technologie simplifie le processus en intégrant des capteurs à effet magnéto-resistif dans des systèmes microfluidiques, permettant un équipement plus petit et des flux de travail plus faciles.

Comme les matériaux biologiques n'ont pas de propriétés magnétiques, l'approche MFC nécessite moins de prétraitement des échantillons par rapport aux systèmes optiques. Cela la rend adaptée aux environnements POC. Cependant, développer des systèmes de MFC capables de fonctionner sans lavage ou étapes supplémentaires pour les échantillons reste un défi.

Défis des systèmes MFC actuels

Bien que des progrès aient été réalisés pour créer des systèmes MFC, il reste encore des obstacles importants à surmonter. De nombreux systèmes existants nécessitent encore des étapes de lavage pour éliminer les nanoparticules non liées, ce qui interrompt le flux de travail. Idéalement, le marquage des cellules cibles devrait se faire dans un système fermé, éliminant le prétraitement des échantillons et assurant que le processus est efficace et simple.

Bien que diverses stratégies aient été explorées, la plupart des recherches se sont concentrées sur le comptage des cellules ou l'analyse des concentrations cellulaires, sans avoir intégré efficacement ces étapes dans un flux de travail POC unifié.

Le flux de travail MFC

Ce travail introduit un flux de travail MFC rationalisé qui combine les étapes essentielles nécessaires à un processus cohérent et efficace. Le flux de travail comprend :

  1. Collecte d'échantillons : Des échantillons de sang sont prélevés sur des patients.
  2. Marquage : L'échantillon de sang est mélangé avec des nanoparticules magnétiques recouvertes d'anticorps qui ciblent des cellules spécifiques, comme les monocytes CD14+.
  3. Détection : Les cellules marquées sont ensuite transportées à travers un canal microfluidique où elles sont attirées vers un élément de détection grâce à un champ magnétique.
  4. Analyse du signal : Au fur et à mesure que les cellules marquées passent devant l'élément de détection, elles modifient la résistance du capteur, créant un signal distinct qui peut être analysé.

Ce dispositif permet de quantifier les cellules directement à partir d'un échantillon de sang total sans avoir besoin de laver ou de lyser les cellules.

Comprendre la performance de la cytométrie de flux magnétique

Pour évaluer l'efficacité de la MFC dans la quantification des concentrations cellulaires, des expériences utilisant des microbilles magnétiques simulant des cellules ont été réalisées. Ces expériences étaient cohérentes à travers diverses concentrations tant dans du saline tampon phosphate que dans des échantillons de sang total.

Les résultats ont montré une relation linéaire entre la concentration de microbilles détectées par la MFC, confirmant que le système peut mesurer avec précision les concentrations sur une large gamme. Cependant, la présence d'autres cellules dans le sang a parfois causé des variations dans les mesures, surtout à des concentrations plus faibles.

Caractéristiques des nanoparticules magnétiques

Les nanoparticules magnétiques jouent un rôle crucial dans la MFC. L'efficacité du marquage cellulaire avec ces nanoparticules peut varier en fonction de leur taille, de leur moment magnétique et de leur capacité à se lier aux cellules cibles. Idéalement, des nanoparticules plus petites réduisent le bruit de fond, ce qui peut interférer avec des lectures précises.

La relation entre la taille des nanoparticules et leur moment magnétique est importante pour optimiser le marquage et obtenir une quantification cellulaire efficace. Le bon choix de nanoparticules peut améliorer considérablement la performance des systèmes MFC.

Gérer le bruit de fond

Un des défis dans l'utilisation des nanoparticules magnétiques est de gérer le bruit de fond dans le système. Les nanoparticules non liées peuvent rester en suspension dans l'échantillon et produire des signaux qui pourraient compliquer la détection des cellules marquées. Pour minimiser ce problème, il est essentiel de choisir des nanoparticules suffisamment petites pour limiter le bruit de fond tout en garantissant qu'elles fournissent un moment magnétique suffisant pour une détection efficace.

L'importance du temps d'incubation

La durée de l'incubation lors de l'utilisation de nanoparticules magnétiques influence également le succès du marquage cellulaire. Des temps d'incubation plus longs peuvent conduire à une meilleure liaison des nanoparticules aux cellules cibles, améliorant le signal détecté lors de la mesure. Cependant, optimiser cette étape est crucial, car une incubation prolongée pourrait ne pas toujours correspondre aux besoins des tests POC rapides.

Quantifier les cellules avec la MFC

La MFC permet de quantifier des cellules spécifiques, comme les monocytes CD14+, grâce à une approche rationalisée. Plusieurs expériences ont montré que le système pouvait efficacement déterminer la concentration de ces cellules en mesurant les signaux produits lorsqu'elles passaient sur les capteurs magnétiques.

Malgré quelques limitations, comme l'influence de cellules de fond et la nécessité de moments magnétiques adéquats, les résultats indiquent que la MFC a un grand potentiel pour une quantification cellulaire fiable.

Évaluation de la variabilité et de la robustesse

Pour garantir la fiabilité du flux de travail MFC, plusieurs échantillons de sang provenant de différents donneurs ont été testés. La cohérence des résultats entre les échantillons a montré que la méthode pouvait produire des données fiables, avec une variabilité dans les mesures restant dans des limites acceptables.

Cette robustesse est essentielle, surtout pour les applications en milieu clinique où des résultats précis et constants sont indispensables.

Directions futures

Alors que la technologie MFC continue de se développer, aborder des défis tels que l'analyse du signal et la conception des nanoparticules sera crucial. Tirer parti de l'intelligence artificielle pour analyser des flux de données complexes pourrait renforcer la capacité des systèmes MFC.

De plus, se concentrer sur l'amélioration de la spécificité et de la cinétique de liaison des anticorps utilisés dans le processus de marquage sera vital pour obtenir une quantification cellulaire plus efficace et fiable.

Conclusion

En résumé, la cytométrie de flux magnétique représente une approche prometteuse pour les tests de point de soin, en particulier pour l'analyse d'échantillons biologiques complexes comme le sang total. En rationalisant le flux de travail et en optimisant les nanoparticules magnétiques et les temps d'incubation, la MFC pourrait devenir un outil précieux pour le diagnostic clinique, fournissant des résultats rapides sans compromettre la fiabilité ou la précision. Les avancées continues en matière de technologie et de méthodologie ouvriront la voie à une adoption plus large de la MFC dans divers contextes médicaux.

Source originale

Titre: Quantitative Magnetic Flow Cytometry in High Hematocrit Conditions for Point-of-Care Testing

Résumé: Quantitative cell analysis in liquid biopsies is essential for many clinical decisions, but it is primarily tied to centralized laboratories. However, access to these laboratories is limited in low-resource settings or for immobile patients, highlighting the urgent need for Point-of-Care (POC) testing infrastructure. Magnetic flow cytometers (MFC) offer a solution, albeit sample processing steps like cell lysis or washing crucially disrupt POC-capable MFC workflows. Here, we investigate conditions for immunomagnetic labeling and direct cell quantification in a streamlined workflow suitable for high hematocrit environments. Magnetic nanoparticles (MNP) are characterized by their size, magnetic moment, and potential to generate signal noise, favoring small (< 50 nm) MNPs. Theoretical models provide the framework for quantifying bound MNPs per cell, revealing labeling quality and giving insight into system requirements for reliable cell detection. Temporal labeling dynamics show suboptimal binding kinetics in whole blood (WB), leading to long incubation periods and only 50% recovery of optically determined concentrations. Besides showing quantitative MFC in WB with biomimetic microbeads, we finally quantify CD14+ monocytes in WB with our streamlined workflow, achieving an intra-assay coefficient of variation (CV) of 0.11 and a CV across multiple donors of 0.10, demonstrating reliable POC flow cytometry close to regulatory standards.

Auteurs: Moritz Leuthner, M. Helou, M. Reisbeck, O. Hayden

Dernière mise à jour: 2024-06-12 00:00:00

Langue: English

Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.11.598398

Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.11.598398.full.pdf

Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.

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