Avancées en spectroscopie de force à molécule unique
Une nouvelle méthode d'étalonnage améliore la précision dans l'étude des molécules biologiques.
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Table des matières
La spectroscopie de force à molécule unique (SMFS) est une technique qui permet aux scientifiques d'étudier comment les molécules biologiques se comportent sous l'effet de forces. Cette méthode peut révéler des infos importantes sur des processus comme le fonctionnement des protéines, la mécanique de l'ADN, les interactions entre les molécules, et la façon dont les protéines se replient.
Un des gros défis que les scientifiques rencontrent avec la SMFS, c'est de mesurer des forces très faibles, souvent inférieures à un piconewton (pN). Ces petites forces sont cruciales pour observer des interactions spécifiques entre les protéines ou des changements subtils dans leur forme, ce qui est important pour comprendre diverses fonctions biologiques, comme comment les cellules se déplacent et se développent.
Avantages des Pinces Magnétiques
Les pinces magnétiques (MT) sont un type d'outil SMFS qui ont plusieurs avantages par rapport à d'autres méthodes, comme les pinces optiques ou la microscopie à force atomique. Les MT peuvent mesurer précisément des forces allant d'environ 0,01 à 100 pN. Elles sont particulièrement efficaces pour mesurer des forces faibles et permettent aux chercheurs d'étudier plusieurs molécules à la fois. Cette capacité est importante car elle aide les chercheurs à obtenir suffisamment de données en une seule expérience, observer des événements rares et tester différentes conditions.
Un autre gros avantage des MT, c'est qu'elles peuvent maintenir une force constante sans avoir besoin d'ajustements fréquents, ce qui est super pour les mesures à long terme. De plus, les MT ne génèrent pas de chaleur ni n'endommagent les échantillons, ce qui permet d'avoir des lectures stables sur de longues périodes. Différents montages avec des aimants peuvent aussi aider les chercheurs à contrôler et suivre les mouvements de torsion des molécules qu'ils étudient.
Comment Fonctionnent les Pinces Magnétiques
Dans un montage MT, les molécules étudiées sont fixées entre une surface et de petites billes magnétiques. Des aimants externes appliquent des forces sur les billes, ce qui influence les molécules. Des caméras haute résolution peuvent capturer des images sur de grandes surfaces, permettant aux chercheurs de suivre plusieurs billes en même temps tout en appliquant une force stable.
Pour obtenir des mesures précises, il est important de calibrer les forces appliquées dans ces expériences. La méthode de calibration la plus courante utilise le mouvement aléatoire des billes au niveau thermique. Cette méthode lie l'énergie du mouvement à la force appliquée, fournissant des résultats plus précis que certaines autres méthodes.
Le Processus de Calibration
Le processus de calibration commence par capturer le mouvement des billes. De longues brins d'ADN sont souvent utilisés pour la calibration parce qu'ils ont des propriétés bien connues. À faibles forces, la relation entre la force appliquée et l'étirement de l'ADN peut être prédite avec précision.
En observant les billes, les chercheurs peuvent déterminer combien elles se déplacent. Ce mouvement est influencé par deux facteurs principaux : la force appliquée et le mouvement thermique naturel des billes dans la solution. En analysant ce mouvement, les chercheurs peuvent calculer la rigidité du piège où les billes sont retenues.
Défis dans la Mesure des Forces
Mesurer des forces avec des MT n'est pas sans défis. Un des défis vient du fait que la caméra utilisée pour suivre les billes peut introduire des erreurs. Si la caméra prend des images trop lentement, elle peut flouter le mouvement et conduire à des résultats inexactes. Cet effet peut être particulièrement problématique à de fortes forces ou avec des liaisons courtes.
De plus, différents types de bruit peuvent affecter les mesures. Ce bruit peut provenir de l'électronique utilisée dans les expériences ou des propriétés physiques des échantillons eux-mêmes. Ces Bruits peuvent déformer les signaux et rendre difficile l'obtention de mesures fiables.
Pour surmonter ces défis, plusieurs méthodes ont été développées pour corriger les impacts du bruit et d'autres distorsions sur les données. Ces méthodes incluent le calcul de la puissance du signal à différentes fréquences ou l'utilisation d'approches statistiques variées pour analyser les données.
Avancées Récentes dans les Méthodes de Calibration
Ces dernières années, une nouvelle méthode appelée la variance de Hadamard (HV) a été introduite. Cette méthode montre des promesses en fournissant des mesures plus précises, surtout face au bruit et à la dérive qui peuvent affecter les résultats.
En testant cette nouvelle méthode, les chercheurs ont simulé différentes conditions qui imitent des réglages expérimentaux. Ils ont trouvé que la méthode HV performait mieux en termes de stabilité et de précision. Elle était particulièrement efficace en présence de bruit coloré, connu pour compliquer les mesures.
Les chercheurs ont également testé la méthode HV par rapport à deux autres méthodes établies : la densité spectrale de puissance (PSD) et la variance d'Allan (AV). Ils ont analysé comment chaque méthode pouvait gérer différents types d'erreurs causées par le bruit et la dérive. Les résultats ont montré que la méthode HV était supérieure pour offrir des mesures cohérentes et précises.
Validation Expérimentale de la Méthode HV
Après avoir simulé les conditions, les chercheurs ont appliqué leurs résultats à des données expérimentales réelles collectées avec des pinces magnétiques. Ils ont utilisé un construct ADN spécifique et suivi le mouvement des billes magnétiques sous différentes conditions de force.
En comparant les résultats de la méthode HV avec ceux de la PSD et de l'AV, ils ont constaté que la méthode HV montrait systématiquement des taux d'erreur plus bas dans l'estimation des forces. Cela suggère que HV peut fournir des résultats plus fiables dans des expériences réelles.
Conclusion et Perspectives Futures
L'introduction de la méthode HV marque un avancement significatif dans le domaine de la spectroscopie de force à molécule unique. En s'attaquant aux défis courants liés au bruit et à la dérive, la méthode HV améliore la précision des mesures de force dans les expériences biologiques.
Cette amélioration est vitale pour les chercheurs cherchant à comprendre les comportements fondamentaux des molécules biologiques dans différentes conditions. À mesure que cette méthode sera adoptée plus largement, elle pourrait mener à de nouvelles découvertes en biologie moléculaire et dans des domaines connexes.
En résumé, l'utilisation des pinces magnétiques combinée à la méthode de calibration HV offre un outil précieux pour les scientifiques étudiant les mécaniques complexes des processus biologiques. Le perfectionnement continu de ces techniques jouera un rôle crucial dans la découverte des complexités de la vie au niveau moléculaire.
Titre: Accurate Drift-Invariant Single-Molecule Force Calibration Using the Hadamard Variance
Résumé: Single-molecule force spectroscopy (SMFS) techniques play a pivotal role in unraveling the mechanics and conformational transitions of biological macromolecules under external forces. Among these techniques, multiplexed magnetic tweezers (MTs) are particularly well suited to probe very small forces, [≤]1 pN, critical for studying non-covalent interactions and regulatory conformational changes at the single-molecule level. However, to apply and measure such small forces, a reliable and accurate force calibration procedure is crucial. Here, we introduce a new approach to calibrate MTs based on thermal motion using the Hadamard variance (HV). To test our method, we develop a bead-tether Brownian dynamics simulation that mimics our experimental system and compare the performance of the HV method against two established techniques: power spectral density (PSD) and Allan variance (AV) analyses. Our analysis includes an assessment of each methods ability to mitigate common sources of additive noise, such as white and pink noise, as well as drift, which often complicate experimental data analysis. Our findings demonstrate that the HV method exhibits overall similar or even higher precision and accuracy, yielding lower force estimation errors across a wide range of signal-to-noise ratios (SNR) and drift speeds compared to the PSD and AV methods. Notably, the HV method remains robust against drift, maintaining consistent uncertainty levels across the entire studied SNR and drift speed spectrum. We also explore the HV method using experimental MT data, where we find overall smaller force estimation errors compared to PSD and AV approaches. Overall, the HV method offers a robust method for achieving sub-pN resolution and precision in multiplexed MT measurements. Its potential extends to other SMFS techniques, presenting exciting opportunities for advancing our understanding of mechano-sensitivity and force generation in biological systems. Therefore, we provide a well-documented Python implementation of the HV method as an extension to the Tweezepy package. Statement of Signi[fi]canceSingle-molecule force spectroscopy techniques are vital for studying the mechanics and conformations of bio-macromolecules under external forces. Multiplexed magnetic tweezers (MTs) excel in applying forces [≤] 1 pN, which are critical for examining non-covalent interactions and regulatory changes at the single-molecule level. Precise and reliable force calibration is essential for these measurements. In this study, we present a new force calibration method for multiplexed MTs using Hadamard variance (HV) based on thermal motion. The HV method shows similar or even higher precision and accuracy to established techniques like power spectral density and Allan variance. Most significantly, it is drift-invariant, maintaining consistent performance across varying experimental conditions. This robustness against drift ensures reliable force application and measurements at sub-pN resolution.
Auteurs: Jan Lipfert, S. D. Pritzl, A. Ulugol, C. Korosy, L. Filion
Dernière mise à jour: 2024-06-17 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.17.599270
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.17.599270.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
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