Simple Science

La science de pointe expliquée simplement

# Physique# Optique# Physique biologique

Avancées dans les techniques d'imagerie NAD(P)H

Une nouvelle méthode d'imagerie améliore la profondeur et la clarté dans l'observation des cellules vivantes.

― 8 min lire


Percée de l'imageriePercée de l'imagerieNAD(P)Hdans les tissus.activités cellulaires plus profondesUne nouvelle méthode révèle les
Table des matières

L'imagerie sans étiquette est super importante pour observer les systèmes vivants, surtout quand il s'agit d'étudier les cellules et leurs activités. Une méthode qui a attiré l'attention, c'est l'imagerie par autofluorescence à deux photons pour visualiser les processus cellulaires en temps réel. Cette approche se concentre sur une molécule appelée NAD(P)H, qui est essentielle pour le métabolisme cellulaire. Mais les méthodes traditionnelles ont du mal à voir les tissus plus profonds à cause de la façon dont la lumière se disperse dans des échantillons épais.

Cet article parle d'une méthode qui améliore la profondeur d'imagerie du NAD(P)H dans les tissus vivants. En utilisant un type spécial de laser et en adaptant des fibres optiques, les chercheurs ont réussi à augmenter la profondeur d'imagerie d'environ 300 micromètres à plus de 700 micromètres. Cette avancée ouvre de nouvelles possibilités pour étudier des systèmes vivants complexes, surtout dans des domaines comme la recherche sur le cancer et la compréhension des réponses immunitaires.

Importance de l'imagerie du NAD(P)H

Le NAD(P)H joue un rôle crucial dans la production d'énergie au sein des cellules. Ça aide à suivre comment les cellules utilisent l'énergie et réagissent à leur environnement. Pouvoir voir le NAD(P)H dans des tissus vivants permet aux chercheurs d'étudier les activités métaboliques en temps réel. C'est particulièrement précieux dans des domaines comme la recherche sur le cancer, où des changements dans le métabolisme peuvent indiquer comment se comportent les cellules cancéreuses.

Les méthodes traditionnelles d'imagerie du NAD(P)H ont leurs limites, principalement à cause de la façon dont la lumière pénètre dans le tissu. Les tissus plus profonds dispersent la lumière plus que les superficiels, ce qui complique la prise d'images claires. En conséquence, les chercheurs manquent souvent des activités cellulaires importantes qui se produisent à des profondeurs plus importantes.

Le défi de la pénétration en profondeur

Quand ils tentent d'imager plus profondément dans les tissus, les chercheurs constatent que la qualité du signal se dégrade considérablement. Par exemple, dans l'imagerie classique à deux photons, la lumière utilisée pour l'excitation a souvent du mal à pénétrer au-delà de 300 micromètres. C'est une barrière significative, surtout pour étudier des tissus épais comme les organes ou les microtissus ingénierés.

Il y a deux raisons principales à cette limitation. D'abord, le signal de fluorescence du NAD(P)H est plus faible que les signaux des colorants fluorescents souvent utilisés en imagerie. Ensuite, la lumière d'excitation nécessaire pour l'imagerie du NAD(P)H a tendance à se disperser davantage dans les tissus plus profonds, réduisant encore la qualité des images.

Nouvelle méthode d'imagerie

Pour surmonter ces défis, les chercheurs ont exploré l'Excitation à trois photons du NAD(P)H à une longueur d'onde de 1100 nanomètres. Cette approche utilise une source lumineuse unique basée sur des fibres optiques multimodes. En livrant des impulsions à haute puissance de crête à travers cette fibre, les chercheurs ont atteint une augmentation notable de la profondeur d'imagerie.

Le processus consiste à ajuster la fibre pour façonner le faisceau de lumière d'une manière qui améliore sa clarté et réduit la dispersion. Cela est réalisé en utilisant un appareil compact qui modifie comment la lumière voyage à travers la fibre. En conséquence, l'équipe a pu générer des images plus nettes tout en minimisant le bruit de fond, ce qui est crucial pour l'imagerie à plus grandes profondeurs.

Résultats clés

L'équipe de recherche a réussi à démontrer que l'excitation à trois photons à 1100 nanomètres permet d'imager au-delà de 700 micromètres de profondeur dans des microtissus humains vivants et ingénierés. La méthode a montré des résultats prometteurs, fournissant des images plus claires et une meilleure détection des activités cellulaires par rapport aux approches traditionnelles à deux photons.

Une découverte importante a été la capacité d'observer le comportement des monocytes en temps réel en utilisant cette nouvelle méthode d'imagerie. Les monocytes sont des cellules immunitaires qui jouent un rôle clé dans la lutte contre les infections. En suivant leurs mouvements et interactions dans les tissus vivants, les chercheurs peuvent obtenir des informations sur le fonctionnement des réponses immunitaires.

Applications en recherche médicale

La nouvelle technique d'imagerie offre de grandes promesses pour divers domaines de la recherche médicale. Quelques applications potentielles incluent :

  1. Recherche sur le cancer : Imager l'activité métabolique dans les tumeurs peut aider à comprendre comment les cellules cancéreuses se développent et se propagent. Cette connaissance pourrait mener à des traitements plus efficaces.

  2. Maladies auto-immunes : En observant comment les cellules immunitaires se comportent dans différents environnements, les chercheurs peuvent obtenir des informations sur les maladies auto-immunes et comment mieux réguler le système immunitaire.

  3. Ingénierie tissulaire : Comprendre comment les tissus ingéniérés fonctionnent en temps réel peut aider à développer de meilleures stratégies de remplacement tissulaire et des thérapies.

  4. Troubles neurodégénératifs : Observer les interactions cellulaires dans les tissus cérébraux pourrait améliorer la compréhension de maladies comme la maladie d'Alzheimer et de Parkinson.

Innovations techniques

Le succès de la nouvelle méthode d'imagerie est attribué à une combinaison de technologies avancées et d'approches innovantes. Les innovations clés suivantes ont aidé à obtenir de meilleurs résultats d'imagerie :

  • Fibres optiques multimodes : En utilisant une fibre multimode standard comme source lumineuse, les chercheurs ont facilité la production d'impulsions à haute puissance de crête à la longueur d'onde désirée de 1100 nanomètres.

  • Formeur de fibre compact : Cet appareil ajuste la façon dont la lumière se propage à travers la fibre, créant un faisceau plus concentré et clair qui est crucial pour l'imagerie des tissus profonds.

  • Impulsions à haute puissance de crête : Utiliser des impulsions ultracourtes à des niveaux de puissance élevés permet une meilleure interaction avec les échantillons biologiques, menant à une détection de signal améliorée.

Comparaison avec les méthodes traditionnelles

En comparant les résultats de la nouvelle méthode d'excitation à trois photons avec l'imagerie traditionnelle à deux photons, des différences significatives ont été notées. La nouvelle technique offre une meilleure clarté et permet aux chercheurs de visualiser des tissus plus profonds sans sacrifier la qualité de l'image.

Dans des tests effectués sur des réseaux microvasculaires vivants, les deux méthodes d'imagerie ont été utilisées sur le même site tissulaire. Alors que les images traditionnelles à deux photons montraient une dégradation de la qualité à des profondeurs dépassant 300 micromètres, la méthode à trois photons maintenait un signal fort et des images claires même à des profondeurs plus importantes.

De plus, la nouvelle méthode d'imagerie capture également des détails des structures cellulaires qui étaient difficiles à voir dans les approches précédentes. Cette capacité pourrait considérablement améliorer l'étude des comportements et interactions cellulaires, notamment dans des environnements tissulaires complexes.

Visualiser les systèmes vivants

La capacité de visualiser les systèmes vivants de manière dynamique est un vrai changement pour la recherche. En permettant une observation en temps réel, les chercheurs peuvent suivre comment les cellules réagissent aux stimuli, se déplacent et interagissent avec leurs voisines.

Par exemple, dans des études impliquant des monocytes, les chercheurs ont pu documenter comment ces cellules immunitaires migrent à travers les tissus. Cette approche d'imagerie dynamique fournit des informations sur les réponses immunitaires, le signalement cellulaire, et comment ces processus peuvent être affectés par des maladies.

Résumé des avantages

La nouvelle technique d'imagerie à trois photons offre plusieurs avantages par rapport aux méthodes traditionnelles :

  1. Imagerie plus profonde : Capacité d'imager des tissus au-delà de 700 micromètres, permettant des études plus complètes de tissus et organes complexes.

  2. Clarté du signal améliorée : Qualité d'image améliorée grâce à la réduction de la dispersion et du bruit, menant à de meilleures observations des activités cellulaires.

  3. Surveillance en temps réel : Capacité à capturer des interactions cellulaires dynamiques au fur et à mesure qu'elles se produisent, fournissant des informations précieuses sur les processus biologiques.

  4. Applications polyvalentes : Les implications de la méthode pour divers domaines de recherche, y compris le cancer, les maladies auto-immunes, l'ingénierie tissulaire et les neurosciences.

Conclusion

L'avancement des techniques d'imagerie du NAD(P)H représente un pas en avant significatif dans l'imagerie biologique. En utilisant l'excitation à trois photons à 1100 nanomètres, les chercheurs ont amélioré la capacité d'observer des cellules vivantes dans des tissus épais. Cette percée améliore non seulement notre compréhension des comportements cellulaires, mais ouvre aussi la voie à de nouvelles découvertes en recherche médicale.

Alors que la technologie d'imagerie continue de se développer, les opportunités d'appliquer ces techniques dans des environnements cliniques et de recherche s'élargissent. Le potentiel pour des perspectives plus profondes sur des systèmes biologiques complexes promet de futures avancées en santé et médecine.

Source originale

Titre: Deep and Dynamic Metabolic and Structural Imaging in Living Tissues

Résumé: Label-free imaging through two-photon autofluorescence (2PAF) of NAD(P)H allows for non-destructive and high-resolution visualization of cellular activities in living systems. However, its application to thick tissues and organoids has been restricted by its limited penetration depth within 300 $\mu$m, largely due to tissue scattering at the typical excitation wavelength (~750 nm) required for NAD(P)H. Here, we demonstrate that the imaging depth for NAD(P)H can be extended to over 700 $\mu$m in living engineered human multicellular microtissues by adopting multimode fiber (MMF)-based low-repetition-rate high-peak-power three-photon (3P) excitation of NAD(P)H at 1100 nm. This is achieved by having over 0.5 MW peak power at the band of 1100$\pm$25 nm through adaptively modulating multimodal nonlinear pulse propagation with a compact fiber shaper. Moreover, the 8-fold increase in pulse energy at 1100 nm enables faster imaging of monocyte behaviors in the living multicellular models. These results represent a significant advance for deep and dynamic metabolic and structural imaging of intact living biosystems. The modular design (MMF with a slip-on fiber shaper) is anticipated to allow wide adoption of this methodology for demanding in vivo and in vitro imaging applications, including cancer research, autoimmune diseases, and tissue engineering.

Auteurs: Kunzan Liu, Honghao Cao, Kasey Shashaty, Li-Yu Yu, Sarah Spitz, Francesca Michela Pramotton, Zhengpeng Wan, Ellen L. Kan, Erin N. Tevonian, Manuel Levy, Eva Lendaro, Roger D. Kamm, Linda G. Griffith, Fan Wang, Tong Qiu, Sixian You

Dernière mise à jour: 2024-04-18 00:00:00

Langue: English

Source URL: https://arxiv.org/abs/2404.11901

Source PDF: https://arxiv.org/pdf/2404.11901

Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.

Merci à arxiv pour l'utilisation de son interopérabilité en libre accès.

Plus d'auteurs

Articles similaires