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Usando CRISPRi pra Controlar Infecções por Fagos

Pesquisadores usam CRISPRi pra influenciar a infecção de fagos em bactérias.

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Índice

CRISPRi, que significa interferência CRISPR, é um método útil pra estudar como os genes funcionam em bactérias. Essa técnica ajuda os cientistas a entender como genes específicos estão ligados a características nas bactérias e como vírus que atacam bactérias, chamados de Bacteriófagos ou fagos, interagem com seus hospedeiros. Também pode ser usada pra criar novas formas de controlar a atividade gênica em bactérias.

Uma forma comum de usar o CRISPRi envolve uma versão modificada do sistema CRISPR de um tipo de bactéria chamada Streptococcus pyogenes. Esse sistema usa uma parte chamada dCas9, que pode se ligar ao DNA sem cortá-lo. Quando o dCas9 se liga ao DNA, ele bloqueia o processo que copia o DNA em RNA, que é um passo necessário pra expressão gênica.

Pra guiar o dCas9 pro lugar certo no DNA, um pedacinho de RNA chamado sgRNA é usado. Esse RNA direciona o dCas9 a se ligar a um local específico no DNA, permitindo que os pesquisadores influenciem a atividade de genes particulares. Esse método é eficaz porque pode atingir quase qualquer gene em bactérias, ajudando os cientistas a investigar as funções gênicas com precisão.

Usando CRISPRi pra Estudar Fagos

Tradicionalmente, o CRISPRi tem sido usado principalmente pra estudar e manipular genes dentro de bactérias. No entanto, os cientistas começaram a ver se também dá pra usar pra atingir fagos, especialmente pra entender os genes dos fagos e controlar seus ciclos de vida. Os fagos são importantes porque podem matar bactérias, o que faz deles ferramentas valiosas pra tratar infecções bacterianas, principalmente aquelas causadas por bactérias resistentes a antibióticos.

Um fago que ganhou atenção é o fago T7. O T7 é um vírus que infecta bactérias E. coli, e faz isso de forma bem eficaz. Ele tem um ciclo de vida bem definido que os pesquisadores estudam há anos. O T7 tem um genoma pequeno, o que facilita a manipulação usando técnicas comuns de laboratório. Ao alterar o fago T7, os cientistas podem potencialmente criar novas terapias para infecções bacterianas.

Neste estudo, os pesquisadores se concentraram em usar o CRISPRi pra influenciar o ciclo de vida do fago T7. Eles selecionaram partes específicas do genoma do fago pra atingir com dCas9 e SgRNAs. Esse direcionamento tinha como objetivo interromper a capacidade do fago de infectar e se replicar dentro do hospedeiro bacteriano.

Planejando o Experimento

Os pesquisadores criaram uma série de sgRNAs pra atingir partes essenciais do genoma do fago, especialmente aquelas envolvidas na capacidade do fago de entrar e dominar a célula hospedeira. Eles identificaram os promotores mais fortes, ou pontos de controle, no DNA que ajudam a iniciar o processo de infecção e replicação. Ao atingir esses pontos, eles esperavam desacelerar ou até bloquear o processo de infecção do fago.

Pra testar a abordagem, os pesquisadores construíram plasmídeos, que são pequenos círculos de DNA, contendo os sgRNAs. Eles também criaram sistemas de reporter fluorescente pra medir quão bem funcionou o direcionamento. A ideia era que se a abordagem do CRISPRi fosse eficaz, os níveis de fluorescência cairiam, indicando que menos genes do fago estavam sendo expressos.

Observando os Efeitos

Depois de construir suas ferramentas, os pesquisadores introduziram os sgRNAs em bactérias infectadas com o fago T7. Eles observaram quão rápido as bactérias se lisaram, ou estouraram, devido à infecção do fago. O tempo que levou pra que as bactérias estourassem é um indicador claro de quão bem o fago conseguiu infectar as bactérias.

Eles descobriram que atingir certas partes do genoma do fago com CRISPRi teve um efeito notável no tempo que levou pra que as bactérias se lisassem. Em particular, bloquear um dos promotores cruciais desacelerou o processo de infecção, indicando que essa parte do genoma desempenha um papel vital nas primeiras fases da infecção.

Curiosamente, enquanto os pesquisadores descobriram que atingir o T7 RNAP, que é crucial pra replicação do fago, teve um forte efeito de redução no laboratório, não mudou drasticamente a velocidade com que as bactérias se lisavam durante a infecção real. Isso sugere que o fago pode ter maneiras de contornar esse bloqueio ou compensar os efeitos do CRISPRi.

Descobertas Adicionais

Os pesquisadores também observaram que quando usaram múltiplos sgRNAs ao mesmo tempo, isso aumentou a eficácia da abordagem do CRISPRi. Ao atingir múltiplos promotores simultaneamente, eles conseguiram alcançar um impacto geral mais forte na capacidade do fago de infectar as bactérias.

Em termos de aplicações práticas, esse método pode potencialmente permitir que os cientistas projetem fagos que podem ser controlados de forma mais precisa. Em vez de precisar modificar o próprio fago, que pode ser complexo, os cientistas poderiam usar CRISPRi pra influenciar como o fago se comporta durante a infecção.

Conclusão

Esse estudo mostra que o CRISPRi pode ser uma ferramenta valiosa pra estudar como os fagos interagem com seus hospedeiros bacterianos. Ao atingir partes específicas do genoma do fago, os pesquisadores podem manipular o processo de infecção e entender melhor a genética envolvida. Embora ainda haja limitações na abordagem, como os efeitos de redução incompletos, as descobertas abrem novas possibilidades para usar o CRISPRi na biologia sintética e na terapia com fagos.

No geral, os resultados demonstram que os métodos de CRISPRi podem influenciar os ciclos de vida dos fagos, abrindo caminho pra novas estratégias de combate a infecções bacterianas usando fagos e ferramentas de biologia sintética. Com mais exploração, essa técnica poderia contribuir significativamente pro desenvolvimento de terapias inovadoras em uma época de aumento da resistência a antibióticos.

Fonte original

Título: Programming CRISPRi-dCas9 to control the lifecycle of bacteriophage T7

Resumo: CRISPR interference (CRISPRi) based on catalytically dead Cas9 nuclease of Streptococcus pyogenes is a programmable and highly flexible tool to interrogate gene function and essentiality in bacteria due to its ability to block transcription elongation at nearly any desired DNA target. Here, I assess how CRISPRi-dCas9 can be programmed to control the life cycle and infectivity of Escherichia coli bacteriophage T7, a highly virulent and obligatory lytic phage, by blocking critical host-dependent promoters that are required for host cell entry and life cycle execution. Using fluorescent reporters demonstrates that the efficacy of CRISPRi-dCas9 towards E. coli RNAP promoters depends on target promoter strength, and that the phages own T7 RNAP can be downregulated very efficiently. Effects on the time to lysis were partially dictated by the chronological order of phage DNA and dCas9 target appearance in the cell, suggesting an accessory role of E. coli RNAP during the early stages of T7 genome ejection. The stringency of the CRISPRi-dCas9 approach was greatly improved when using multiplex sgRNAs to target multiple phage regions simultaneously, resulting in a 25% increase in the time to lysis and up to 8-fold reduction in plaque size. Overall, this work expands CRISPRi-dCas9 as a flexible tool to non-invasively manipulate and probe the lifecycle and infectivity of otherwise native T7 phage.

Autores: Tobias Bergmiller

Última atualização: 2024-05-15 00:00:00

Idioma: English

Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.05.15.594216

Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.05.15.594216.full.pdf

Licença: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Alterações: Este resumo foi elaborado com a assistência da AI e pode conter imprecisões. Para obter informações exactas, consulte os documentos originais ligados aqui.

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