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Proteine CRISP e il loro ruolo nello sviluppo degli spermatozoi e degli embrioni

La ricerca rivela che le proteine CRISP sono fondamentali per la funzione degli spermatozoi e il successo dell'embrione.

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Quando gli spermatozoi mammiferi escono dai testicoli, non possono fertilizzare un ovulo subito. Devono passare attraverso due fasi principali per acquisire la capacità di fertilizzare. Prima, viaggiano attraverso un tubo chiamato epididimo, dove maturano e vengono immagazzinati in un posto sicuro. Questo ambiente li aiuta a sviluppare la capacità di fertilizzare gli ovuli. Dopo, gli spermatozoi subiscono un altro cambiamento chiamato capacitation mentre si muovono attraverso il tratto riproduttivo femminile. Questo cambiamento è necessario affinché possano penetrare e fertilizzare un ovulo.

Una volta che gli spermatozoi raggiungono l'ovidotto, dove avviene la fertilizzazione, devono rompere gli strati che circondano l'ovulo. Questo implica superare il cumulus oophorus e la zona pellucida (ZP) prima di potersi fondere con la superficie dell'ovulo. Quando ciò accade, si forma uno zigote unicellulare, che inizia il suo viaggio di sviluppo in un organismo multicellulare. Anche se sappiamo molto su come gli spermatozoi maturano dopo essere usciti dai testicoli, abbiamo ancora molte domande su come il loro tempo nell'epididimo influenzi lo sviluppo dell'embrione.

L'Epididimo e la Maturazione degli Spermatozoi

L'epididimo è l'area principale in cui gli spermatozoi maturano. Ha un tipo speciale di tessuto che aiuta a trasportare ioni, formare proteine e secretare diverse sostanze. Tra queste proteine secretate ci sono le proteine CRISP, che si trovano principalmente nell'area riproduttiva maschile. Nei mammiferi, sono state identificate quattro proteine CRISP, che assistono gli spermatozoi mentre passano attraverso i tratto riproduttivo maschile e femminile.

Le proteine CRISP hanno una struttura unica composta da diversi residui di cisteina conservati e due domini funzionali. La parte N-terminale delle proteine CRISP aiuta nelle interazioni tra le cellule ed è coinvolta in vari processi, mentre la parte C-terminale regola i canali ionici. Si è scoperto che queste proteine svolgono ruoli essenziali nella maturazione degli spermatozoi, nella capacitation e nella fertilizzazione.

Ruolo delle Proteine CRISP nella Fertilizzazione

La CRISP2 è prodotta nei testicoli, mentre altre, come la CRISP1, sono prodotte nell'epididimo e dipendono dagli ormoni maschili. La CRISP1 è conosciuta per prevenire la fertilizzazione precoce inibendo un canale del Calcio cruciale chiamato CatSper, che è vitale per la funzione degli spermatozoi. Inoltre, la CRISP1 aiuta gli spermatozoi a interagire con la zona pellucida e a fondersi con l'ovulo. La CRISP4 è simile alla CRISP1 in quanto è anch'essa prodotta nell'epididimo e aiuta durante la maturazione degli spermatozoi e il processo di fertilizzazione. La CRISP3 ha una distribuzione più ampia ed è presente in molte aree, comprese le ghiandole che aiutano con le funzioni immunitarie.

Anche se vediamo che le proteine CRISP sono essenziali per la fertilizzazione, studi su topi maschi che mancano di singole proteine CRISP mostrano che possono comunque produrre prole. Questo suggerisce che altre proteine CRISP potrebbero compensarsi a vicenda quando una è assente. Tuttavia, quando più geni CRISP vengono alterati, può influenzare significativamente la fertilità.

La ricerca su topi maschi privi di CRISP1 e CRISP3 mostra che, anche se possono ancora fertilizzare con successo gli ovuli, lo sviluppo successivo degli Embrioni è compromesso. Gli embrioni non raggiungono la fase di blastocisti, indicando che possono verificarsi difetti nello sviluppo embrionale precoce anche se la fertilizzazione stessa è avvenuta con successo. Inoltre, questi topi avevano spermatozoi che faticavano a muoversi correttamente nel tratto riproduttivo femminile, rendendo più difficile per gli spermatozoi sopravvivere e raggiungere l'ovulo.

Indagare lo Sviluppo Iniziale dell'Embryo

Nel cercare di capire come l'assenza di CRISP1 e CRISP3 influenzi lo sviluppo dell'embrione, i ricercatori volevano vedere se i problemi derivassero da un ritardo nella fertilizzazione. Per controllare questo, hanno esaminato come gli spermatozoi si muovevano attraverso il tratto riproduttivo femminile poco dopo l'accoppiamento. È emerso che gli spermatozoi mutanti erano in grado di raggiungere l'ovidotto in modo efficiente, proprio come gli spermatozoi di controllo, suggerendo che i problemi nello sviluppo embrionale precoce non erano dovuti a problemi di trasporto degli spermatozoi.

Anche se non c'erano problemi nel raggiungere il sito di fertilizzazione, gli embrioni risultanti avevano una percentuale di successo inferiore nello svilupparsi oltre la fase a due cellule. Questa scoperta ha portato alla conclusione che fattori al di là di un semplice ritardo nella fertilizzazione stavano causando i problemi nello sviluppo embrionale precoce.

Tecniche di Raccolta dello Spermatozoo e Inseminazione

Per esplorare ulteriormente i difetti nello sviluppo precoce, gli scienziati hanno inseminato direttamente spermatozoi epididimali mutanti e di controllo nel tratto riproduttivo femminile. Anche con tassi di fertilizzazione normali, le percentuali di embrioni che raggiungevano la fase di blastocisti da spermatozoi mutanti erano inferiori. Questo mostra che i problemi nello sviluppo embrionale esistevano negli spermatozoi mutanti prima che entrassero in contatto con l'ovulo.

Sono stati condotti anche studi di fertilizzazione in vitro (IVF). Quando gli spermatozoi sono stati mescolati con ovuli privati dei loro strati protettivi esterni, i tassi di fertilizzazione per gli spermatozoi mutanti erano ancora inferiori. Questo suggerisce che l'incapacità di svilupparsi in una blastocisti era legata a fattori diversi dalla capacità degli spermatozoi di penetrare il rivestimento dell'ovulo.

Indagare gli Eventi Iniziali della Fertilizzazione

Per una migliore comprensione dei meccanismi che influenzano lo sviluppo dell'embrione, i ricercatori hanno esaminato il DNA degli ovuli fertilizzati. Gli ovuli fertilizzati da spermatozoi mutanti mostrano che molti erano ancora in uno stato noto come Metafase II, indicando che c'erano problemi con la ripresa della meiosi dopo la fertilizzazione. Ciò significa che gli ovuli fertilizzati erano in ritardo nel progredire attraverso le fasi iniziali dello sviluppo.

Monitorando i livelli di calcio negli ovuli dopo la fertilizzazione, non sono state trovate differenze tra spermatozoi di controllo e mutanti riguardo ai modelli di oscillazione del calcio. Questo indicava che i problemi osservati con gli spermatozoi mutanti non erano dovuti a problematiche con la dinamica del calcio durante il processo di attivazione dell'ovulo.

Analizzare l'Integrità del DNA negli Spermatozoi

Poiché i fallimenti nello sviluppo embrionale potrebbero anche derivare da DNA danneggiato, i ricercatori hanno esaminato i livelli di frammentazione del DNA negli spermatozoi mutanti. Hanno scoperto che gli spermatozoi mutanti mostravano livelli di frammentazione del DNA significativamente più elevati rispetto agli spermatozoi di controllo. Questo suggerisce che il danno al DNA negli spermatozoi potrebbe portare a problemi nei processi di fertilizzazione e sviluppo precoce.

Il legame tra elevata frammentazione del DNA degli spermatozoi e sviluppo embrionale non riuscito è stato notato in vari studi. Gli spermatozoi con DNA danneggiato possono comunque fertilizzare un ovulo, ma l'embrione risultante ha spesso difficoltà a svilupparsi normalmente.

Il Ruolo del Calcio nella Funzione degli Spermatozoi

I ricercatori hanno considerato come l'assenza di CRISP1 e CRISP3 potrebbe portare a livelli più elevati di frammentazione del DNA negli spermatozoi. Poiché queste proteine non vengono prodotte nei testicoli ma svolgono ruoli nell'epididimo, è probabile che si stessero verificando difetti lì. L'aumento del danno al DNA negli spermatozoi mutanti fa pensare che queste proteine potrebbero essere necessarie per mantenere l'integrità del DNA degli spermatozoi durante il loro passaggio attraverso l'epididimo.

Inoltre, sono stati segnalati casi in cui l'esposizione a determinati cationi potrebbe indurre la frammentazione del DNA negli spermatozoi. Pertanto, i livelli più alti di calcio negli spermatozoi mutanti potrebbero contribuire alla loro rottura del DNA, aumentando la probabilità di problemi nello sviluppo embrionale in seguito.

Significato dei Risultati

In generale, questo insieme di ricerche supporta l'idea che l'epididimo faccia più che semplicemente aiutare gli spermatozoi a guadagnare la capacità di fertilizzare. Contribuisce in modo significativo allo sviluppo precoce dell'embrione. La presenza delle proteine CRISP1 e CRISP3 nell'epididimo sembra essenziale per mantenere l'integrità del DNA degli spermatozoi, influenzando il successo dello sviluppo embrionale precoce.

Queste scoperte hanno anche implicazioni per comprendere l'infertilità umana. Dato che gli esseri umani hanno proteine CRISP comparabili, è possibile che anch'esse giochino un ruolo nei risultati riproduttivi. L'incidenza della frammentazione del DNA negli spermatozoi è associata a vari problemi di infertilità maschile, evidenziando la rilevanza di queste proteine e dei loro effetti sullo sviluppo embrionale.

Conclusione

Questa ricerca fa luce sulla complessa relazione tra la funzione degli spermatozoi e lo sviluppo embrionale. Sottolinea l'importanza dei fattori presenti nell'epididimo, in particolare le proteine CRISP, che svolgono un ruolo nel mantenere la qualità degli spermatozoi e nel supportare risultati embrionali sani nei primi stadi. Comprendere questi meccanismi contribuirà a migliori approcci per diagnosticare e trattare l'infertilità negli esseri umani.

Fonte originale

Titolo: Contribution of the epididymis beyond fertilization: relevance of CRISP1 and CRISP3 for sperm DNA integrity and early embryo development

Estratto: Numerous reports show that the epididymis plays a key role in the acquisition of sperm fertilizing ability but less information exists on its contribution to embryo development. Evidence from our laboratory showed that mammalian CRISP (Cysteine-Rich Secretory Proteins), known to be expressed in the epididymis, to regulate calcium (Ca2+) channels and to participate in fertilization, may also be relevant for embryo development. More specifically, we found that males with simultaneous mutations in Crisp1 and Crisp3 genes exhibited normal in vivo fertilization but impaired embryo development. In the present work, aimed to investigate the mechanisms underlying this reproductive phenotype, we observed that embryo development failure was not due to delayed fertilization as no differences in sperm transport within the female tract nor in in vivo fertilization were found shortly after mating. The observation that impaired embryo development was also found in eggs fertilized by epididymal sperm either after uterine insemination or in vitro fertilization, revealed that the defects were already present at epididymal level. Of note, eggs fertilized in vitro by mutant sperm exhibited impaired meiotic resumption not due to defects in Ca2+oscillations during egg activation, prompting us to examine potential sperm DNA defects. Interestingly, higher levels of both DNA fragmentation and intracellular Ca2+ were observed for mutant than for control epididymal sperm, supporting sperm DNA damage, likely linked to a Ca2+ dysregulation, as the main responsible for the early development failure of mutant males. Together, our results support the contribution of the epididymis beyond fertilization, identifying CRISP1 and CRISP3 as novel male factors relevant for DNA integrity and early embryo development. Given the existence of human functional homologues of CRISP and the incidence of DNA fragmentation in infertile men, we believe these findings not only provide relevant information on the impact of epididymal factors on embryonic development but will also contribute to a better understanding, diagnosis and treatment of human infertility.

Autori: Patricia S. Cuasnicu, V. Sulzyk, L. Curci, L. N. Gonzalez, A. Rebagliati Cid, M. Weigel Munoz

Ultimo aggiornamento: 2024-03-22 00:00:00

Lingua: English

URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.19.585807

Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.19.585807.full.pdf

Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Modifiche: Questa sintesi è stata creata con l'assistenza di AI e potrebbe presentare delle imprecisioni. Per informazioni accurate, consultare i documenti originali collegati qui.

Si ringrazia biorxiv per l'utilizzo della sua interoperabilità ad accesso aperto.

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