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Avancées en microscopie de fluorescence : réduction de la phototoxicité

De nouvelles techniques améliorent l'imagerie des cellules vivantes tout en minimisant les dégâts.

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La microscopie par fluorescence, c'est un super outil pour voir des structures minuscules dans les cellules. Avec le temps, cette technique a évolué, passant de la capture d'images 3D d'échantillons fixes (non vivants) à l'enregistrement de processus dynamiques dans des cellules et des animaux vivants. Ces nouvelles méthodes peuvent faire des images et vidéos détaillées de cellules vivantes, aidant les scientifiques à comprendre comment fonctionnent les cellules en temps réel. Mais ces progrès apportent aussi quelques défis.

Le défi de la Phototoxicité

Un gros problème dans l'étude des cellules vivantes, c'est la phototoxicité. Quand les scientifiques éclairent des cellules avec des lumières vives pour faire des images, les cellules peuvent être abîmées. Ça arrive parce que les étiquettes fluorescentes, qui servent à rendre certaines parties des cellules visibles, peuvent nuire aux cellules si elles sont exposées à trop de lumière. La phototoxicité peut faire que les cellules fonctionnent mal, changent de forme, arrêtent de grandir, voire meurent.

Comprendre les Espèces réactives de l'oxygène (ROS)

Les dégâts causés par la phototoxicité viennent surtout des espèces réactives de l'oxygène, appelées ROS. Ce sont des molécules nocives qui se forment quand une étiquette fluorescente absorbe de la lumière et réagit avec l'oxygène de l'environnement. Un type particulier de ROS qui inquiète beaucoup, c'est l'oxygène singulet. Il peut interagir avec des parties importantes des cellules, comme les protéines et l'ADN, entraînant divers problèmes.

Le besoin de mesures de protection

En améliorant les techniques de microscopie par fluorescence, les scientifiques ont de plus en plus besoin de trouver des moyens pour réduire la phototoxicité. Ils veulent s'assurer que les données collectées à partir de cellules vivantes restent précises et reflètent les vraies conditions à l'intérieur des cellules. Pour ça, les chercheurs ont commencé à utiliser des agents protecteurs appelés quenchers d'état triplet (TSQ) pour minimiser les effets nuisibles de la lumière sur les cellules.

Quenchers d'état triplet (TSQ)

Les TSQ aident à réduire les effets négatifs de la lumière sur les étiquettes fluorescentes. Ils ont été utilisés en microscopie depuis un certain temps, et les stratégies récentes ont consisté à lier les TSQ directement aux colorants fluorescents. Cette méthode peut potentiellement augmenter la stabilité des colorants et diminuer le risque de phototoxicité.

L'accent sur les colorants rhodamine

Les colorants rhodamine sont devenus populaires en imagerie de cellules vivantes car ils ont de super propriétés pour capturer des images claires. Ils sont lumineux et peuvent être utilisés de plein de manières. Certains scientifiques travaillent à améliorer encore ces colorants en les liant avec des TSQ, comme la mercaptoéthylamine (MEA) ou le cyclooctatétrène (COT). Cette combinaison vise à réduire les effets nuisibles de la lumière sur les cellules.

Résultats expérimentaux

Dans les expériences, les chercheurs ont constaté que lier des TSQ aux colorants rhodamine aidait à rendre les colorants moins nocifs pour les cellules. Par exemple, en comparant le comportement de différentes combinaisons de colorants, ils ont observé que les rhodamines conjuguées aux TSQ causaient moins de dommages aux cellules pendant l'imagerie. Ça veut dire que les chercheurs peuvent capturer plus de données à partir de cellules vivantes sans prendre trop de risques pour leur santé.

Imagerie de cellules vivantes avec des rhodamines douces

Le développement de colorants rhodamine plus doux a offert aux scientifiques une solution pratique pour imager des parties spécifiques des cellules vivantes. Ils ont testé diverses combinaisons pour voir lesquelles fonctionnaient le mieux, en se concentrant sur les dégâts causés par les colorants pendant l'imagerie. Les résultats ont montré que certaines rhodamines liées au COT permettaient des sessions d'imagerie plus longues sans nuire aux cellules.

Tests et résultats

Pour évaluer l'efficacité de ces nouveaux colorants, les scientifiques ont réalisé plusieurs tests. Par exemple, ils ont regardé combien de lumière était nécessaire pour abîmer les cellules étiquetées avec différents colorants. Les colorants liés au COT montraient systématiquement des niveaux de dommages plus bas, ce qui est prometteur pour les futures applications en imagerie de cellules vivantes.

Applications en imagerie cellulaire

Les rhodamines douces peuvent être utilisées pour visualiser plein de composants des cellules, y compris les mitochondries (les structures qui produisent de l'énergie), la membrane plasmique (la couche externe de la cellule), et même le noyau (le centre de contrôle de la cellule). En utilisant ces colorants plus doux, les chercheurs peuvent prendre des images continues sans s'inquiéter de abîmer les cellules.

Rhodamines fluorogéniques en action

Les rhodamines fluorogéniques ont des propriétés uniques qui leur permettent de changer de couleur selon leur environnement, ce qui les rend utiles pour l'imagerie sans étapes de lavage supplémentaires. Lorsqu'elles sont combinées avec des TSQ, ces colorants offrent un moyen d'obtenir des images plus claires tout en minimisant le potentiel de dommages aux cellules.

Imagerie à long terme avec phototoxicité réduite

Dans l'imagerie de cellules vivantes, minimiser la phototoxicité est crucial, surtout pour des études à long terme. Les chercheurs ont montré qu'en utilisant les nouveaux colorants rhodamine, on peut avoir des sessions d'imagerie beaucoup plus longues, capturant des processus vitaux sans causer de dégâts significatifs aux cellules.

Le rôle des protéines auto-étiquetantes

Les étiquettes protéiques auto-étiquetantes permettent aux chercheurs de fixer des étiquettes fluorescentes directement sur des protéines spécifiques dans les cellules. Ça offre un moyen d'étudier ces protéines dans le temps. Cependant, à cause du risque de phototoxicité, les nouvelles rhodamines plus douces sont idéales pour ça, garantissant que les protéines peuvent être observées sans être affectées négativement.

Conclusion

Les avancées dans la technologie des colorants rhodamine et l'ajout de TSQ ont ouvert de nouvelles possibilités pour la microscopie par fluorescence. Ces développements permettent une meilleure imagerie des cellules vivantes tout en minimisant les risques liés à la phototoxicité. Au fur et à mesure que les chercheurs continuent à peaufiner ces techniques, ils peuvent recueillir des données plus précises sur les processus cellulaires, menant à d'autres découvertes en biologie et en médecine.

Source originale

Titre: Gentle rhodamines for live-cell fluorescence microscopy

Résumé: Rhodamines have been continuously optimized in brightness, biocompatibility, and colors to fulfill the demands of modern bioimaging. However, the problem of phototoxicity caused by the excited fluorophore under long-term illumination has been largely neglected, hampering their use in time-lapse imaging. Here we introduce cyclooctatetraene (COT) conjugated rhodamines that span the visible spectrum and exhibit significantly reduced phototoxicity. We identified a general strategy for the generation of Gentle Rhodamines, which preserved their outstanding spectroscopic properties and cell permeability while showing an efficient reduction of singlet-oxygen formation and diminished cellular photodamage. Paradoxically, their photobleaching kinetics do not go hand in hand with reduced phototoxicity. By combining COT-conjugated spirocyclization motifs with targeting moieties, these gentle rhodamines compose a toolkit for time-lapse imaging of mitochondria, DNA, and actin and synergize with covalent and exchangeable HaloTag labeling of cellular proteins with less photodamage than their commonly used precursors. Taken together, the Gentle Rhodamines generally offer alleviated phototoxicity and allow advanced video recording applications, including voltage imaging.

Auteurs: Zhixing Chen, T. Liu, J. Kompa, J. Ling, N. Lardon, Y. Zhang, L. Reymond, M. Tran, Z. Yang, H. Zhang, Y. Liu, S. Pitsch, P. Zou, L. Wang, K. Johnsson

Dernière mise à jour: 2024-02-08 00:00:00

Langue: English

Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.06.579089

Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.06.579089.full.pdf

Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.

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