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# Biologie# Génomique

Nouvelles techniques pour corriger les erreurs d'épissage observées dans les troubles génétiques

La recherche sur EDSpliCE donne de l'espoir pour corriger les défauts d'épissage dans les maladies génétiques.

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La bonne Épissure est super importante pour produire des transcriptions mRNA correctes dans les cellules eucaryotes. C'est une étape clé avant la traduction, où l'mRNA est transformé en protéines fonctionnelles. Le processus d'épissure est contrôlé par un groupe de protéines appelées épissosomes, qui reconnaissent des séquences spécifiques dans le pré-mRNA. Ces séquences indiquent où les introns (régions non codantes) doivent être retirés et où les exons (régions codantes) doivent être rassemblés.

Ces dernières années, les scientifiques ont trouvé de plus en plus de Variantes génétiques qui provoquent des maladies en perturbant l'épissure normale. Ces variantes entraînent la formation de transcriptions défectueuses, ce qui peut être une raison fréquente des troubles héréditaires. La découverte de ces variantes a mis en lumière l'importance d'une épissure correcte, montrant que de nombreuses maladies sont liées à ce processus.

Approches thérapeutiques pour corriger l'épissure

La recherche sur les variantes qui affectent l'épissure a ouvert de nouvelles voies pour développer des traitements innovants. Un point d'intérêt majeur a été sur les variantes introniques profondes, qui peuvent activer des pseudoexons, ajoutant des régions codantes supplémentaires qui peuvent perturber la fonction normale des protéines. Les oligonucleotides anti-sens (ASOs) et l'édition génomique CRISPR/Cas9 ont émergé comme des méthodes prometteuses pour résoudre ces problèmes d'épissure.

Les ASOs fonctionnent en se liant à des séquences spécifiques sur le pré-mRNA qui provoquent une épissure incorrecte, empêchant l'épissosome de reconnaître ces régions. Cela aide à restaurer la formation correcte de l'mRNA mature. Cependant, une administration répétée des ASOs est souvent nécessaire car leurs effets sont temporaires.

L'édition génomique CRISPR/Cas9 offre une solution plus permanente en réparant directement les défauts d'épissure dans l'ADN. Les méthodes actuelles nécessitent généralement deux ARN guides pour cibler les zones génomiques autour des variantes introniques profondes, ce qui augmente le risque de changements non intentionnels dans l'ADN, comme l'instabilité chromosomique.

Introduction d'une nouvelle plateforme d'édition : EDSpliCE

Pour améliorer les méthodes existantes, des chercheurs ont créé une nouvelle plateforme d'édition appelée Enhanced-Deletion Splicing Correction Editing (EDSpliCE). Cette approche innovante vise à corriger les erreurs d'épissure causées par des variantes introniques profondes. EDSpliCE a montré des promesses lors de tests préliminaires impliquant des maladies rétiniennes héréditaires, souvent liées à des défauts d'épissure.

Dans les expériences initiales, les chercheurs se sont concentrés sur plusieurs variantes causant des maladies au sein des gènes ABCA4 et USH2A, connus pour provoquer des conditions comme la maladie de Stargardt et le syndrome d'Usher. Ces gènes sont grands, ce qui rend leur ciblage difficile avec des méthodes de thérapie génique traditionnelles s'appuyant sur des vecteurs viraux.

Comment fonctionne EDSpliCE

La plateforme EDSpliCE utilise une version modifiée de la protéine Cas9, qui est liée à une autre protéine appelée TREX2 qui aide à améliorer le processus d'édition. Cette modification permet à EDSpliCE de générer des suppressions plus grandes dans l'ADN, ciblant les régions responsables des erreurs d'épissure. En créant des changements importants dans les séquences, la plateforme empêche l'épissosome de reconnaître et d'inclure les pseudoexons dans la transcription finale de l'mRNA.

Les chercheurs ont comparé EDSpliCE à la méthode standard Cas9, notant qu'EDSpliCE pourrait restaurer plus efficacement l'épissure normale dans plusieurs variantes testées. La nouvelle plateforme a montré un potentiel pour corriger les défauts d'épissure dans différents modèles expérimentaux, démontrant sa polyvalence et son efficacité.

Tests d'EDSpliCE dans des cultures cellulaires

Pour évaluer davantage l'efficacité d'EDSpliCE, des scientifiques ont mené des expériences en utilisant des lignées cellulaires humaines, notamment des cellules HEK293T. Ces tests impliquaient de co-transfecter les cellules avec des constructions de minigène qui imitent les défauts d'épissure liés aux variantes ciblées. En utilisant différentes combinaisons d'EDSpliCE et de Cas9 standard, ils ont pu voir à quel point chaque méthode restaurait bien l'épissure correcte.

Les résultats ont montré qu'EDSpliCE surpassait systématiquement la méthode standard Cas9, atteignant des pourcentages plus élevés de transcriptions correctement épissées. Dans les cas où plusieurs ARN guides étaient testés, EDSpliCE a donné des résultats nettement meilleurs, ce qui suggère que l'ajout de TREX2 améliore le processus d'édition.

Validation dans des cellules dérivées de patients

En allant plus loin dans la recherche, les scientifiques ont testé EDSpliCE sur des cellules dérivées de patients ayant des conditions génétiques spécifiques. Ces fibroblastes dérivés de patients, qui portent les variantes pathogènes, ont été électroporés avec les composants d'EDSpliCE, et puis les résultats de l'édition ont été analysés.

Les analyses ont démontré qu'EDSpliCE récupérait efficacement les défauts d'épissure dans ces cellules de patients, produisant de hauts niveaux de transcriptions correctement épissées. Les résultats étaient encourageants, indiquant qu'EDSpliCE a le potentiel d'être développé en une approche thérapeutique pour traiter les troubles génétiques liés à des erreurs d'épissure.

Considérations de sécurité et effets hors cible

Un aspect crucial de l'édition génomique est d'assurer la sécurité des approches utilisées. Les chercheurs ont évalué les possibles effets hors cible d'EDSpliCE. Ils ont réalisé un séquençage à haut débit de l'ADN génomique édité pour évaluer si des changements non intentionnels se produisaient en dehors des régions ciblées.

Les résultats ont montré qu'EDSpliCE maintenait un profil d'effets hors cible comparable à celui de Cas9 standard, indiquant que la nouvelle méthode n'augmente pas significativement le risque de mutations indésirables. De plus, les suppressions plus grandes et plus directionnelles induites par EDSpliCE réduisaient la probabilité d'instabilité chromosomique, en faisant une option plus sûre pour les applications thérapeutiques.

Direction future et applications

Les résultats prometteurs de la plateforme EDSpliCE suggèrent qu'elle pourrait devenir un outil efficace pour traiter diverses maladies génétiques liées aux erreurs d'épissure, notamment celles impliquant des variantes introniques profondes. La capacité à induire des changements prévisibles et importants dans les mécanismes d'épissure pourrait permettre des thérapies ciblées pouvant être adaptées à des patients individuels.

En particulier, les maladies oculaires représentent un domaine d'intérêt significatif, car beaucoup de ces conditions sont héréditaires et liées à des défauts d'épissure. Le développement d'un système AAV dual ou de plus petits orthologues de Cas9 pourrait faciliter des méthodes de livraison adaptées aux applications cliniques.

Conclusion

L'étude de l'épissure et de sa relation avec les maladies génétiques continue de révéler des aperçus importants sur des thérapies potentielles. Avec EDSpliCE, les chercheurs font un pas en avant vers des solutions d'édition génomique plus efficaces et plus sûres pour corriger les défauts d'épissure. En continuant à affiner cette technologie et à la soumettre à des essais cliniques, l'espoir est de fournir de nouvelles voies pour traiter les troubles héréditaires causés par des erreurs d'épissure, améliorant finalement les résultats pour les patients et faisant progresser la thérapie génique dans son ensemble.

Grâce à des recherches et à des développements continus, EDSpliCE se présente comme une alternative prometteuse aux méthodes existantes, montrant le potentiel de révolutionner la gestion des troubles génétiques liés à des anomalies d'épissure. Alors que la communauté scientifique adopte des stratégies innovantes comme EDSpliCE, l'avenir du traitement génétique semble de plus en plus optimiste, ouvrant la voie à des interventions plus accessibles et efficaces pour les personnes avec des conditions héréditaires.

Source originale

Titre: EDSpliCE, a CRISPR-Cas9 gene editing platform to rescue splicing, effectively corrects inherited retinal dystrophy-associated splicing defects

Résumé: BackgroundCorrect splicing of transcripts is essential to ensure the production of functional gene products in eukaryotic cells. Missplicing of transcripts has been identified as the underlying molecular mechanisms behind various disease-causing variants in a wide range of inherited genetic conditions. Achieving therapeutic splicing correction is possible through antisense oligonucleotide and CRISPR/Cas9 strategies. However, while antisense oligonucleotides offer effective modulation, they do not enable for permanent correction. On the other hand, current CRISPR/Cas9 approaches often rely on dual-gRNA-inducing deletion of larger pieces of DNA, containing the site(s) responsible for the splicing defect, particularly the elimination of pseudoexons, raising concerns about potential chromosomal instability. ResultsThe novel gene editing strategy, Enhanced-Deletion Splicing Correction Editing (EDSpliCE), just uses single gRNAs to effectively correct aberrant splicing caused by pseudoexon sequence inclusion into the mature mRNA. By employing Cas9 fused to a human exonuclease (TREX2), EDSpliCE achieves targeted enhanced deletions of sequences involved in pseudoexon recognition, thereby restoring correct splicing of the pre-mRNA. By addressing two isolated (ABCA4:c.5197-557G>T and USH2A:c.7595-2144A>G) and two clustered (ABCA4:c.5196+1013A>G and ABCA4:c.5196+1056A>G) pathogenic deep-intronic variants, we demonstrated effective splicing rescue in minigene assay employing distinct single gRNAs. Further validation in patient-derived fibroblasts for the common USH2A:c.7595-2144A>G variant confirmed consistent and high splicing correction. Additionally, the characterization of achieved gene editing affirmed the generation of enhanced deletions by EDSpliCE, revealed high directionality of editing events for all the single gRNAs tested in patient-derived fibroblasts and did not show higher off-target editing potential on selected loci. ConclusionsThe successful implementation of the EDSpliCE platform for splicing correction and modulation offers a promising and versatile gene editing approach to address splicing defects, potentially providing a safer option to existing gene editing strategies.

Auteurs: Pietro De Angeli, S. Shliaga, A. Flores-Tufino, E. Roschi, S. Spaag, K. Stingl, L. Kuehlewein, B. Wissinger, S. Kohl

Dernière mise à jour: 2024-03-30 00:00:00

Langue: English

Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.27.587013

Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.27.587013.full.pdf

Licence: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/

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