Avancées génétiques dans la recherche sur Eubacterium limosum
De nouvelles techniques améliorent le génie génétique de E. limosum pour des applications en santé et environnement.
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Table des matières
- Importance de l'ingénierie génétique dans E. limosum
- Développement d'une bibliothèque de recombinases
- Sélection des recombinases actives
- Optimisation du système de recombinase
- Intégration de Cas9 pour une ingénierie sans marqueurs
- Applications pratiques des nouvelles techniques
- Conclusion
- Directions futures
- Source originale
Eubacterium limosum est un type de bactérie qui commence à attirer l'attention parce qu'elle peut changer son métabolisme en fonction des différentes sources de nourriture. Cette bactérie fait partie du microbiome intestinal humain, qui est un ensemble de micro-organismes vivant dans notre système digestif. Ce qui rend E. limosum spécial, c'est sa capacité à manger des matériaux contenant du carbone, comme le dioxyde de carbone, et à les transformer en substances utiles. Ce processus pourrait aider à réduire les gaz à effet de serre, un objectif important aujourd'hui.
Une des raisons pour lesquelles les scientifiques s'intéressent à E. limosum, c'est sa flexibilité à digérer divers matériaux, y compris le méthanol et le formate. Elle aide aussi à décomposer des composés alimentaires importants, ce qui lie cette bactérie à la santé humaine. Cette propriété fait d'E. limosum un acteur clé dans l'étude de divers problèmes de santé liés à l'intestin.
En tant que bactérie du groupe des acétogènes, E. limosum est équipée d'outils permettant aux scientifiques de modifier sa génétique. Cela inclut la connaissance de son génome (l'ensemble complet des gènes) et la capacité de modifier ces gènes. De nouvelles méthodes ont été développées pour aider les scientifiques à éditer le génome d'E. limosum de manière plus efficace. Cependant, il y a encore des perspectives d'amélioration pour rendre ces techniques plus rapides et plus faciles.
Importance de l'ingénierie génétique dans E. limosum
L'ingénierie génétique consiste à modifier la composition génétique d'un organisme pour changer ses caractéristiques. Pour E. limosum, cela peut être particulièrement utile pour étudier son métabolisme et créer des souches capables de produire des substances importantes à partir de sources de carbone. Les outils actuellement disponibles ont rencontré certains défis, comme nécessiter beaucoup de travail ou être lents. Pour surmonter ces défis, les scientifiques ont travaillé sur de nouvelles méthodes plus rapides.
Une des méthodes actuelles, la recombinaison homologue, est un processus où les bactéries peuvent échanger du matériel génétique. Les scientifiques ont exploré l'utilisation d'une variété de recombinases (protéines qui aident à cet échange) pour améliorer l'ingénierie génétique dans E. limosum. Certaines des recrues les plus connues viennent d'une bactérie commune appelée E. coli, qui a été utilisée pour de nombreux projets d'ingénierie génétique. Mais ces outils peuvent ne pas fonctionner aussi bien dans d'autres bactéries en raison des différences dans leur composition génétique.
Développement d'une bibliothèque de recombinases
Pour trouver des recombinases efficaces pour E. limosum, les scientifiques ont créé une bibliothèque de 57 gènes de recombinases uniques. Cela a impliqué la sélection de gènes provenant de différentes sources, y compris des gènes connus d'autres bactéries et de phages (virus qui infectent les bactéries). Une recherche a révélé certains gènes dans des souches d'E. limosum, qui ont été ajoutés à la bibliothèque.
L'objectif de cette bibliothèque était d'évaluer quelles recombinases fonctionnent le mieux dans E. limosum. Les scientifiques ont créé une souche d'E. limosum avec un gène modifié pour identifier facilement les événements de recombinaison réussis. Il a été constaté que la bibliothèque contenait des recombinases très actives, dont certaines avaient une forte préférence pour certains types de séquences d'ADN.
Sélection des recombinases actives
Dans l'étape suivante, les scientifiques ont testé la bibliothèque pour voir quelles recombinases fonctionnaient efficacement. Ils ont utilisé des séquences d'ADN conçues pour activer un gène modifié et produire une caractéristique spécifique. En transformant la bactérie avec différentes recombinases de la bibliothèque, ils ont mesuré la croissance des colonies qui affichaient la caractéristique souhaitée.
Les résultats ont montré que la bibliothèque avait une forte activité recombinase, surtout lorsqu'elle était utilisée avec certains types d'ADN. Une recombinase provenant d'une souche spécifique d'E. limosum a été identifiée comme la plus efficace, ce qui en fait un élément clé pour de futures modifications génétiques de la bactérie.
Optimisation du système de recombinase
Une fois la recombinase la plus prometteuse identifiée, les scientifiques ont optimisé les conditions pour son utilisation en ingénierie génétique. Ils ont testé différentes longueurs et concentrations d'ADN pour trouver la meilleure combinaison pour une recombinaison réussie. Il a été établi que des séquences d'ADN plus courtes fonctionnaient mieux, en particulier à des concentrations élevées.
De plus, les scientifiques ont exploré différentes modifications des séquences d'ADN pour améliorer l'efficacité de la recombinaison. Malgré certaines attentes, certaines modifications n'ont pas amélioré le processus et ont révélé que les concentrations élevées d'ADN existantes étaient suffisantes.
Les temps de récupération après la transformation ont également été évalués. Il a été découvert qu'une période de récupération de trois à six heures était la meilleure pour assurer la survie des cellules et des modifications génétiques réussies.
Intégration de Cas9 pour une ingénierie sans marqueurs
Pour améliorer encore l'efficacité des modifications génétiques, les scientifiques ont combiné le système de recombinase avec une technologie appelée Cas9. Cas9 est un outil qui peut couper l'ADN à des endroits spécifiques, permettant des changements génétiques plus précis. En liant Cas9 avec le système de recombinase, ils visaient à garantir que seules les bactéries avec des mutations réussies survivraient.
Utiliser Cas9 de cette manière a permis de supprimer les mutations indésirables et d'améliorer les chances d'obtenir les souches souhaitées. Les scientifiques ont démontré cette méthode sur une souche d'E. limosum avec un gène qui produisait un changement de couleur. En mutant avec succès ce gène à l'aide de la recombinase et de Cas9, ils ont confirmé que les nouvelles souches avaient bien subi les changements prévus.
Applications pratiques des nouvelles techniques
Comme exemple pratique des techniques développées, les scientifiques ont voulu créer une souche d'E. limosum qui ne pourrait pas former de Biofilms. Les biofilms peuvent créer des couches épaisses qui rendent difficile la manipulation des bactéries en laboratoire. L'équipe avait précédemment identifié les gènes responsables de la formation de biofilms et créé une souche modifiée avec des méthodes antérieures. Cette fois, ils ont utilisé les nouvelles stratégies de recombinase et de Cas9 pour atteindre leur objectif sans laisser de marqueurs de sélection.
Après avoir confirmé la mutation réussie par séquençage génétique, l'équipe a testé la capacité de la nouvelle souche à former un biofilm. Ils ont utilisé la centrifugation pour déterminer si la nouvelle souche pouvait se pelletter ou se déposer dans une solution, ce qu'elle a réussi à faire. Cela a confirmé que la nouvelle souche ne produisait pas le biofilm épais de son prédécesseur.
Conclusion
Les avancées réalisées dans les techniques d'ingénierie génétique pour E. limosum sont significatives. En développant une bibliothèque de recombinases robuste et en intégrant des outils comme Cas9, les scientifiques ont jeté les bases de modifications génétiques plus efficaces et plus performantes. Ces outils aideront à créer des souches ingénierées d'E. limosum capables de produire des produits précieux à partir de sources de carbone tout en améliorant la compréhension de la biologie des acétogènes.
Au-delà d'E. limosum, la recherche a des implications plus larges pour la communauté de la biologie synthétique, car les techniques peuvent être appliquées à d'autres bactéries de la famille des Clostridia. La capacité de modifier facilement ces organismes ouvre des portes pour de futures recherches et développements, profitant à la fois à la compréhension scientifique et aux applications pratiques dans divers secteurs.
Directions futures
En regardant vers l'avenir, les techniques développées dans cette recherche peuvent être affinées et appliquées à une variété de micro-organismes. Les domaines clés pour les travaux futurs incluent l'exploration de plus de recombinases provenant de sources diverses, l'amélioration de l'efficacité des systèmes existants et l'application de ces techniques à d'autres microbes importants.
Avec les avancées continues en ingénierie génétique, le potentiel de développer des microbes capables de relever des défis environnementaux ou de produire des composés utiles à partir de déchets est à portée de main. Le travail réalisé avec E. limosum constitue une étape essentielle dans ce parcours, offrant une approche modulaire aux modifications génétiques qui pourrait révolutionner la manière dont les scientifiques étudient et exploitent les micro-organismes.
En continuant à libérer le potentiel des bactéries grâce à des modifications génétiques adaptées, les chercheurs peuvent œuvrer vers un avenir durable où ces petits organismes contribuent de manière significative à résoudre des problèmes mondiaux urgents.
Titre: Development of a recombineering system for the acetogen Eubacterium limosum with Cas9 counterselection for markerless genome engineering
Résumé: Eubacterium limosum is a Clostridial acetogen that efficiently utilizes a wide range of single-carbon substrates and contributes to metabolism of health-associated compounds in the human gut microbiota. These traits have led to interest in developing it as a platform for sustainable CO2-based biofuel production to combat carbon emissions, and for exploring the importance of the microbiota in human health. However, synthetic biology and metabolic engineering in E. limosum have been hindered by the inability to rapidly make precise genomic modifications. Here, we screened a diverse library of recombinase proteins to develop a highly efficient oligonucleotide-based recombineering system based on the viral recombinase RecT. Following optimization, the system is capable of catalyzing ssDNA recombination at an efficiency of up to 2%. Addition of a Cas9 counterselection system allows recombination to reach an efficiency of up to 100%, enabling creation of genomic point mutations in a scarless and markerless manner. We deployed this system to create a clean knockout of the extracellular polymeric substance (EPS) gene cluster, generating a strain incapable of biofilm formation. This approach is rapid and simple, not requiring laborious homology arm cloning, and can readily be retargeted to almost any genomic locus. This work overcomes a major bottleneck Eubacterium limosum genetic engineering by enabling precise genomic modifications, and provides both a roadmap and associated recombinase plasmid library for developing similar systems in other Clostridia of interest. Graphical Abstract O_FIG O_LINKSMALLFIG WIDTH=200 HEIGHT=106 SRC="FIGDIR/small/588731v1_ufig1.gif" ALT="Figure 1"> View larger version (32K): [email protected]@11b1f0borg.highwire.dtl.DTLVardef@1931600org.highwire.dtl.DTLVardef@1896e4c_HPS_FORMAT_FIGEXP M_FIG C_FIG
Auteurs: Benjamin M Woolston, P. A. Sanford
Dernière mise à jour: 2024-04-12 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.04.09.588731
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.04.09.588731.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
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