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Intégrons : Acteurs clés dans la résistance aux antibiotiques

Les intégrons bactériens facilitent le partage de gènes, ce qui influence la résistance aux antibiotiques.

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Les Intégrons bactériens sont des systèmes super importants qui aident certaines bactéries, surtout celles avec des parois cellulaires fines appelées bactéries Gram-négatives, à s’adapter aux changements dans leur environnement. On trouve ces intégrons dans la partie principale de l’ADN cellulaire des bactéries ou sous forme de petits morceaux d’ADN mobiles. Ces intégrons mobiles sont cruciaux pour la façon dont les bactéries partagent des gènes, notamment ceux qui peuvent les rendre résistantes aux antibiotiques. Du coup, les intégrons sont essentiels pour comprendre la Résistance aux antibiotiques.

C'est quoi les intégrons ?

Les intégrons sont des structures génétiques qui peuvent rassembler et réorganiser des morceaux d'ADN appelés Cassettes de gènes. Ce processus se fait grâce à une méthode spécifique qui permet aux intégrons de gérer quels gènes ils gardent et lesquels ils utilisent. Un intégron a deux parties principales. La première est une plateforme stable qui inclut un gène Intégrase, essentiel au processus de réarrangement, et son promoteur qui aide à contrôler l’expression des gènes. La deuxième partie est la plateforme de bibliothèque de cassettes, qui contient diverses cassettes de gènes empilées ensemble.

Structure des intégrons

Les intégrons contiennent des sites appelés sites attC. Ces sites peuvent varier en taille et en séquence, ce qui les rend divers dans leur structure. Chaque site attC a un arrangement unique qui permet de fonctionner avec l’intégrase. Ces sites ont souvent une séquence palindromique, ce qui les aide à se plier en forme d'oreille de dépassement, nécessaire pour que l’intégrase puisse se fixer et effectuer sa fonction.

Fonctionnalité des intégrons

Lors d'un processus appelé la réponse SOS, qui se produit quand une cellule bactérienne est stressée, l’intégron devient actif. Cela veut dire que l’intégrase et les cassettes de gènes proches du promoteur peuvent s’exprimer. Beaucoup de cassettes de gènes restent inactives jusqu'à ce que l’intégrase soit déclenchée pour les exciser de l’arrangement dans lequel elles sont stockées. L’intégrase fait cela en reconnaissant les sites attC qui flanquent les cassettes, leur permettant d’être coupées et réattachées à un site spécifique dans l’intégron.

Contrairement à beaucoup d’autres systèmes, l’intégrase fonctionne avec des éléments d’ADN simple brin. Elle forme un complexe avec plusieurs molécules d’intégrase et deux structures pliées en forme d’oreille, ce qui permet à l’intégrase de couper les cassettes de gènes de la bibliothèque.

Efficacité de Recombinaison

Les recherches montrent que l’efficacité de l’intégrase peut varier énormément selon les sites attC avec lesquels elle travaille. Les facteurs qui influencent cette efficacité incluent la capacité de ces structures d’ADN à se plier, leur longueur et leur séquence. Certaines variations peuvent rendre le processus de recombinaison cinq fois plus efficace ou moins efficace que d'autres.

Un aspect clé de l’efficacité de recombinaison est lié à la formation de structures en forme d’oreille. Des changements dans la séquence peuvent impacter l'énergie nécessaire pour former les structures d'oreille nécessaires à la reconnaissance et à l'attachement, ce qui affecte à son tour la façon dont l’intégrase peut faire son job.

Pince optique et stabilité du complexe synaptique

Les scientifiques ont développé des méthodes pour étudier la stabilité du système d’intégron et du complexe synaptique qu’il forme. Une de ces méthodes utilise des pinces optiques, qui peuvent manipuler de minuscules molécules d'ADN et mesurer leurs propriétés mécaniques. En attachant des constructions d'ADN avec différents sites attC à des billes et en utilisant des lasers pour tirer sur ces billes, les chercheurs peuvent observer comment le complexe synaptique reste ensemble ou se sépare sous tension.

En concevant des séquences d’ADN spécifiques pour imiter les systèmes naturels, les chercheurs peuvent évaluer la stabilité du complexe. Ils découvrent que différentes structures mènent à des niveaux de stabilité variés. Certaines structures tiennent bien ensemble, tandis que d'autres peuvent se séparer facilement.

Le rôle des variants d’intégrase

L’intégrase elle-même peut aussi être modifiée pour voir comment ces changements affectent son attachement à l'ADN et la stabilité globale du complexe synaptique. Par exemple, des mutations dans l’intégrase peuvent réduire sa capacité à se lier aux sites attC, entraînant de faibles efficacités de recombinaison. Certaines mutations n'impactent qu'une partie du complexe, tandis que d'autres peuvent affaiblir considérablement l'ensemble de la structure.

En introduisant des changements précis à l’intégrase ou à l'ADN avec lequel elle interagit, les chercheurs peuvent en apprendre plus sur le fonctionnement des intégrons et sur leur capacité d’adaptation. Comprendre ça est vital, surtout pour savoir comment les bactéries peuvent partager des traits comme la résistance aux antibiotiques.

Lien avec la résistance aux antibiotiques

Les intégrons bactériens contribuent de manière significative au problème de la résistance aux antibiotiques. Ils permettent aux bactéries de partager et d’exprimer rapidement de nouveaux gènes qui peuvent les aider à survivre face aux antibiotiques. Quand les bactéries acquièrent des gènes de résistance via des intégrons, elles peuvent devenir difficiles à traiter. Comprendre comment fonctionnent les intégrons et comment contrôler leur activité pourrait mener à de nouvelles stratégies pour combattre la résistance aux antibiotiques.

Résumé des découvertes

À travers une série d'expériences, les chercheurs ont trouvé que la stabilité mécanique du système d’intégron est étroitement liée à sa capacité à recombiner efficacement. Les résultats indiquent que la structure et la séquence de l'ADN jouent un rôle crucial dans ce processus. Des complexes plus stables tendent à avoir une efficacité de recombinaison plus élevée, tandis que des complexes plus faibles peuvent mener à un partage de gènes inefficace.

Ces découvertes vont au-delà de la recherche fondamentale et ont d'importantes implications pour la santé publique. En ciblant les mécanismes qui régulent la stabilité et la fonction des intégrons, il pourrait être possible de développer de nouvelles approches thérapeutiques pour prévenir la propagation de la résistance aux antibiotiques chez les bactéries.

Directions futures

L'étude continue des intégrons bactériens continue de dévoiler de nouvelles perspectives sur la régulation des gènes et la résistance aux antibiotiques. Les recherches futures se concentreront probablement sur une meilleure compréhension des dynamiques des interactions d’intégrase et des exigences structurelles pour une recombinaison réussie. Il y a un potentiel pour développer de nouveaux inhibiteurs ou modificateurs de l'activité des intégrons qui pourraient aider à gérer plus efficacement les populations bactériennes.

En renforçant notre connaissance dans ce domaine, on peut avancer vers une meilleure gestion de la résistance aux antibiotiques et améliorer les résultats des traitements pour les infections causées par des bactéries résistantes. Explorer les rôles des intégrons dans diverses espèces bactériennes peut également élargir notre compréhension de l'écologie et de l'évolution microbienne.

En gros, la recherche sur les intégrons est une partie vitale de la lutte contre la menace grandissante de la résistance aux antibiotiques dans les soins de santé d’aujourd’hui.

Source originale

Titre: The recombination efficiency of the bacterial integron depends on the mechanical stability of the synaptic complex

Résumé: The predominant tool for adaptation in Gram-negative bacteria is a genetic system called integron. Under conditions of stress, it rearranges gene cassettes, ensuring their sampling through expression, to offer a solution for overcoming the initial stress. Integrons are a major actor of multiple antibiotic resistances, a recognized major global health threat. Cassettes are recombined by a unique recombination process involving a tyrosine recombinase - the IntI integrase - and folded single-stranded DNA hairpins - the attC sites which terminate each cassette. Four recombinases and two attC sites form a macromolecular synaptic complex, which is key to the recombination process and the focus of our study. The bottom strand of all attC sites shows highest recombination efficiency in vivo than the top one, however, the efficiency still varies several orders of magnitude and the underlying reason remains unclear. Here, we established an optical tweezers force-spectroscopy assay that allows us to probe the synaptic complex stability. We found for seven combinations of attC sites great variability in the mechanical stability. Two protein variants also showed a strong influence on the mechanical stability. We then determined the in vivo recombination efficiencies of the different attC site combinations and protein variants and discovered a strong correlation between recombination efficiency and mechanical stability of the synaptic complex, indicating a regulatory mechanism from the DNA sequence to the macromolecular complex stability. Taking into account known forces during DNA metabolism, we suggest that the variation of the in vivo recombination efficiency is mediated strongly by the synaptic complex stability.

Auteurs: Michael Schlierf, E. Vorobevskaia, C. Loot, D. Mazel

Dernière mise à jour: 2024-04-13 00:00:00

Langue: English

Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.04.09.588808

Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.04.09.588808.full.pdf

Licence: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/

Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.

Merci à biorxiv pour l'utilisation de son interopérabilité en libre accès.

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