Avancées dans la recherche sur l'ADN ancien grâce à de nouvelles techniques d'enrichissement
Cette étude passe en revue de nouvelles méthodes pour analyser efficacement l'ADN ancien.
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Table des matières
- Pourquoi l’Enrichissement est important
- Le réactif 1240k
- Importance des comparaisons précises
- Objectifs de recherche
- Préparation des échantillons
- Processus d'enrichissement
- Séquençage des bibliothèques
- Traitement des données
- Évaluation des coûts et de l’efficacité
- Évaluation du biais
- Regroupement d'échantillons
- Conclusion
- Source originale
- Liens de référence
L’ADN ancien (ADNA) c’est de l’ADN qui vient de restes anciens, comme des os. Les chercheurs étudient cet ADN pour en savoir plus sur les populations humaines passées et leurs déplacements. Mais un gros souci avec l’aDNA, c’est qu’il se mélange souvent avec de l’ADN d’autres sources, ce qui complique l’obtention de résultats fiables. Cette contamination peut venir de diverses sources, comme des bactéries et des processus de manipulation. Pour régler ce problème, les scientifiques commencent à utiliser des techniques spécifiques qui aident à concentrer l’ADN d’intérêt tout en filtrant l’ADN indésirable.
Enrichissement est important
Pourquoi l’Une méthode qui a gagné en popularité, c’est d’utiliser des produits chimiques spéciaux appelés sondes ou appâts. Ces derniers sont conçus pour s’accrocher aux segments d’ADN que les chercheurs veulent étudier. En procédant ainsi, les scientifiques peuvent augmenter la quantité d’ADN pertinent dans leurs échantillons, ce qui rend l’analyse moins chère et plus facile.
Avant, les chercheurs devaient compter sur des méthodes plus chères appelées Séquençage shotgun. Cette technique fournit beaucoup de données, mais peut coûter cher. L’introduction de méthodes d’enrichissement ciblées a permis aux chercheurs d’économiser de l’argent tout en continuant à obtenir les informations nécessaires.
Le réactif 1240k
En 2012, une nouvelle façon de concevoir ces sondes a été proposée, en se concentrant sur des échantillons d’ADN humain. Ça a donné lieu à un outil connu sous le nom de « réactif 1240k », conçu pour travailler avec un million de zones spécifiques d’ADN. Cet outil a aidé à produire d’énormes quantités de données pour les études sur l’ascendance humaine. Cependant, l’accès à ce réactif était limité et nécessitait une collaboration avec quelques groupes de recherche, ce qui a posé des défis pour de nombreux chercheurs.
En 2021, deux entreprises sont intervenues pour produire des kits ciblant les mêmes zones d’ADN que le réactif 1240k. Ces nouveaux kits étaient disponibles pour tous les chercheurs, ce qui a facilité les études. Malgré cette avancée, certaines découvertes récentes ont soulevé des inquiétudes. Les kits d’une entreprise ont montré un biais important dans les résultats, ce qui a compliqué les comparaisons.
Importance des comparaisons précises
Pour les chercheurs travaillant en paléogénomique, il est crucial de comparer les nouvelles données avec les données existantes. Cela signifie s'assurer que différentes méthodes n'introduisent pas de biais indésirables. Par exemple, si les chercheurs mélangent des échantillons de différentes sources pendant l’enrichissement, cela pourrait affecter les résultats finaux. C'est pourquoi il est essentiel de suivre les protocoles de près et d'être prudent quant aux modifications qui pourraient introduire des erreurs.
Objectifs de recherche
L'objectif de cette étude est d'évaluer l'efficacité des nouveaux kits d'enrichissement de Twist Bioscience en utilisant une variété d'échantillons humains anciens. Les chercheurs veulent comparer les données obtenues grâce au séquençage shotgun approfondi avec les données recueillies à travers une ou deux rondes d'enrichissement avec ces nouveaux kits. Ils cherchent aussi à évaluer si le regroupement de plusieurs bibliothèques pour l'enrichissement donne des résultats fiables ou s'il introduit des biais supplémentaires.
Préparation des échantillons
Pour cette recherche, des échantillons de 24 restes humains anciens ont été collectés dans différentes régions, y compris l'Europe et l'Asie du Sud-Est. Avant d'extraire l'ADN, les échantillons ont été stérilisés pour éviter toute contamination sur les surfaces. Les chercheurs ont ensuite utilisé une méthode optimisée qui fonctionne bien avec de l'ADN dégradé. Après extraction, ils ont préparé l'ADN pour le séquençage, s'assurant d'avoir un échantillon de haute qualité à travailler.
Processus d'enrichissement
Pour augmenter la quantité d'ADN pertinent, les chercheurs ont amplifié les bibliothèques, atteignant la quantité cible nécessaire pour l'enrichissement. Pendant le processus d'enrichissement, ils ont créé des réactions où l'ADN des échantillons était mélangé selon différentes stratégies : en utilisant des bibliothèques uniques ou en regroupant plusieurs bibliothèques ensemble.
Les chercheurs étaient prudents pour suivre combien d'ADN adéquat était présent tout au long de ce processus. En analysant les résultats des deux méthodes, ils pouvaient évaluer quelle approche a donné les meilleurs résultats.
Séquençage des bibliothèques
Après l'enrichissement, toutes les bibliothèques ont subi un séquençage, ce qui consiste à lire l'ADN et à rassembler des informations sur sa composition. Les chercheurs ont utilisé un système de séquençage spécifique pour s'assurer qu'ils obtenaient des données de haute qualité pour comparaison.
Traitement des données
Une fois l'ADN séquencé, l'étape suivante était d'analyser les données brutes. Cela impliquait de faire correspondre les lectures d'ADN à un génome de référence pour évaluer la qualité, les niveaux de contamination et d'autres aspects importants des échantillons. Ils ont aussi regardé l'efficacité de l'enrichissement, y compris combien d'ADN utile avait été obtenu pour chaque échantillon.
Évaluation des coûts et de l’efficacité
Un aspect clé de cette recherche était de déterminer si les méthodes d'enrichissement étaient rentables par rapport aux méthodes de séquençage traditionnel. Il a été observé que l'utilisation des kits d'enrichissement Twist était moins chère par zone d'ADN analysée comparé au séquençage shotgun classique. Cette découverte était particulièrement significative pour les échantillons ayant de faibles quantités d'ADN adéquat.
Les chercheurs ont constaté qu'en général, deux rondes d'enrichissement étaient plus rentables qu'une seule, bien que des échantillons de haute qualité ne bénéficiaient parfois pas d'un enrichissement supplémentaire.
Évaluation du biais
Pour garantir l'exactitude de leurs découvertes, les chercheurs ont examiné le potentiel de biais introduit pendant le processus d'enrichissement. En évaluant les données de différentes méthodes, ils n'ont trouvé aucune différence significative, suggérant que les kits Twist offraient des résultats fiables, contrairement à certaines méthodes précédentes qui montraient des biais clairs.
Regroupement d'échantillons
Une autre enquête importante était de savoir si le regroupement de plusieurs échantillons pendant l'enrichissement affectait les résultats. Les chercheurs ont découvert que le regroupement n'entravait pas significativement le nombre de marqueurs génétiques obtenus. Bien que le regroupement puisse entraîner une contamination potentielle, leurs tests n'ont pas montré de niveaux détectables de contamination croisée entre les échantillons.
Conclusion
Cette étude met en avant les avancées dans le domaine de la paléogénomique et l'importance de choisir soigneusement les méthodes d'enrichissement. Les résultats indiquent que les techniques modernes d'enrichissement, comme celles de Twist Biosciences, peuvent fournir des résultats fiables et rentables, permettant ainsi aux chercheurs de mieux comprendre les populations humaines anciennes.
À mesure que les chercheurs continuent à affiner leurs méthodes et outils, la capacité de récupérer et d'analyser l'ADN ancien jouera un rôle crucial pour percer les mystères de notre passé humain. En considérant soigneusement la méthodologie, les chercheurs peuvent s'assurer d'obtenir des données exactes et significatives pour éclairer leurs études.
Titre: Optimised in-solution enrichment of over a million ancient human SNPs
Résumé: In-solution hybridisation enrichment of genetic markers is a method of choice in paleogenomic studies, where the DNA of interest is generally heavily fragmented and contaminated with environmental DNA, and where the retrieval of genetic data comparable between individuals is challenging. Here, we benchmarked the commercial "Twist Ancient DNA" reagent from Twist Biosciences using sequencing libraries from ancestrally diverse ancient human samples with low to high endogenous DNA content (0.1-44%). For each library, we tested one and two rounds of enrichment, and assessed performance compared to deep shotgun sequencing. We find that the "Twist Ancient DNA" assay provides robust enrichment of [~]1.2M target SNPs without introducing allelic bias that may interfere with downstream population genetics analyses. Additionally, we show that pooling up to 4 sequencing libraries and performing two rounds of enrichment is both reliable and cost-effective for libraries with less than 27% endogenous DNA content. Above 38% endogenous content, a maximum of one round of enrichment is recommended for cost-effectiveness and to preserve library complexity. In conclusion, we provide researchers in the field of human paleogenomics with a comprehensive understanding of the strengths and limitations of different sequencing and enrichment strategies, and our results offer practical guidance for optimising experimental protocols.
Auteurs: Roberta Davidson, X. Roca-Rada, S. Ravishankar, L. Taufik, C. Haarkötter, E. Collen, P. Webb, M. P. Williams, M. I. Mahmud, E. N. I. Djami, G. A. Purnomo, C. Santos, A. Malagosa, L. R. Manzanilla, A. M. Silva, S. Tereso, V. Matos, P. C. Carvalho, T. Fernandes, A.-F. Maurer, J. C. Teixeira, R. Tobler, L. Fehren-Schmitz, B. Llamas
Dernière mise à jour: 2024-05-16 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.05.16.594432
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.05.16.594432.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
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