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Nouvelle méthode pour étudier la méiose humaine

Une technique révolutionnaire pour provoquer la méiose humaine dans des cellules cultivées en laboratoire.

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La reproduction sexuelle chez de nombreux êtres vivants dépend d'un processus appelé Méiose. Ce processus aide à créer des cellules spécialisées, appelées gamètes, qui sont nécessaires à la reproduction. Bien que de nombreuses études se soient penchées sur la méiose chez des animaux comme les souris, les scientifiques ont rencontré des difficultés à l’étudier chez les humains. C'est parce qu'il n'y a pas beaucoup de moyens fiables d'observer la méiose humaine en laboratoire et qu'il peut être difficile, parfois même contraire à l'éthique, d'obtenir des cellules humaines pour étude. Trouver un moyen de générer des cellules méiotiques à partir de cellules humaines cultivées en laboratoire pourrait améliorer notre compréhension de ce processus reproductif important et pourrait conduire à de nouveaux traitements pour l'infertilité.

Perspectives des études sur les animaux

La recherche sur les animaux a révélé des aspects clés de la façon dont la méiose fonctionne chez les mammifères. Par exemple, les scientifiques ont découvert que certains signaux et changements dans l'ADN sont nécessaires au processus. Chez les souris, les chercheurs ont pu démarrer la méiose dans des environnements de laboratoire et même créer des descendants en bonne santé à partir de ces gamètes. Cependant, en ce qui concerne les cellules humaines, des tentatives similaires n'ont pas été aussi fructueuses. Les études précédentes se sont principalement concentrées sur la mesure d'états cellulaires spécifiques, en utilisant des techniques qui pourraient ne pas refléter exactement le processus méiotique réel dans les ovocytes humains.

Présentation d'une nouvelle approche

Dans ce travail, nous présentons une méthode pour étudier la méiose à l'aide de cellules humaines qui peuvent se développer en divers types de cellules, connues sous le nom de cellules souches pluripotentes induites (HiPSCs). Grâce à des tests minutieux de différentes conditions, nous avons trouvé des moyens de déclencher l'expression de gènes nécessaires à la méiose. En inhibant certains processus et en encourageant l'activité de facteurs spécifiques, nous avons pu initier la méiose tant dans les hiPSCs humaines mâles que femelles. Notre recherche montre que cette nouvelle approche produit avec succès des cellules à différents stades de méiose, semblables à celles trouvées chez les organismes vivants. Cette méthode pourrait être particulièrement précieuse pour les chercheurs se concentrant sur la méiose humaine et pourrait conduire à la création de gamètes humains en laboratoire à l'avenir.

Dépistage des facteurs clés

Pour identifier les facteurs importants nécessaires à la méiose, nous avons analysé des données existantes sur des cellules de gonades fœtales humaines, qui contiennent une variété de types cellulaires impliqués dans le développement reproductif. Nous avons confirmé des Marqueurs spécifiques qui indiquent des cellules méiotiques précoces et tardives. En utilisant des lignées de hiPSC modifiées qui brillent sous certaines conditions, nous avons testé de nombreux facteurs pour trouver ceux qui favorisent la méiose. Cela a impliqué d'évaluer la façon dont ces facteurs activaient l'expression des gènes liés à la méiose.

Trouver des conditions optimales

Nous avons restreint notre recherche à un plus petit ensemble de facteurs en fonction des résultats précédents. Certains de ces facteurs ont légèrement influencé l'expression génique, mais nous avons découvert qu'une combinaison de quelques facteurs clés améliorait considérablement l'activation des gènes liés à la méiose. Notamment, un certain type de milieu que nous avons utilisé, ainsi que des traitements spécifiques, ont considérablement augmenté l'expression génique liée à la méiose. En revanche, certains traitements étaient nocifs pour les cellules et réduisaient l'expression génique attendue.

Le rôle de l'inhibition de DNMT1

Grâce à l'application de nos facteurs principaux, nous avons réussi à induire un taux élevé de cellules exprimant des marqueurs méiotiques précoces. Cependant, l'expression des marqueurs méiotiques tardifs faisait encore défaut. Nous avons émis l'hypothèse que simplement promouvoir les bons facteurs pourrait ne pas suffire ; nous devrions également diminuer les effets des facteurs qui inhibent la méiose. En testant cette idée, nous avons découvert que l'inhibition d'une enzyme spécifique appelée DNMT1 entraînait une augmentation des niveaux de marqueurs méiotiques tardifs. Des études antérieures ont montré que réduire la méthylation de l'ADN, un processus favorable à l'expression des gènes, est essentiel pour établir le bon environnement à la méiose.

Identification des cellules méiotiques

Ensuite, nous souhaitions explorer plus en détail les patterns d'expression génique dans les cellules traitées avec les facteurs identifiés. Nous avons intégré des vecteurs d'expression pour divers facteurs candidats dans nos hiPSCs et avons suivi les changements dans l'expression génique au fil du temps. En triant et en analysant ces cellules, nous avons confirmé que la plupart d'entre elles étaient dans un état pré-méiotique, avec certains progrès observés vers des cellules complètement méiotiques.

Comprendre les stades de la méiose

Pour comprendre quels stades de méiose étaient présents dans nos cellules traitées, nous avons utilisé des techniques de coloration fluorescent pour visualiser plusieurs marqueurs associés à différentes phases de la méiose. Nous avons observé qu'après une période spécifique, nous pouvions clairement identifier trois stades de méiose dans les cellules traitées. La visualisation montrait des motifs distincts qui indiquent une progression réussie à travers le processus méiotique.

Progression au fil du temps

Nous avons surveillé les cellules pendant une période de 15 jours, en évaluant leur développement à intervalles réguliers. Les premiers signes de méiose ont commencé à apparaître vers le sixième jour, et au douzième jour, les cellules présentaient clairement des caractéristiques d'un stade méiotique ultérieur. Tout au long de cette période de suivi, nous avons noté comment le nombre de cellules a d'abord augmenté puis s'est stabilisé après une semaine. L'expression de divers marqueurs méiotique a également été suivie, avec les marqueurs méiotique précoces apparaissant en premier, suivis de ceux liés aux stades ultérieurs.

Changements d'expression génique

En analysant les données d'expression génique collectives des cellules traitées, nous avons remarqué que les cellules changeaient progressivement d'un état pluripotent vers un état plus proche de la lignée des cellules germinales. À des stades précoces, de nombreuses cellules avaient encore des niveaux élevés d'un marqueur associé à la pluripotence. Cependant, au fil du temps, les niveaux de ce marqueur ont diminué, tandis que les niveaux d'expression des gènes associés à la méiose augmentaient en conséquence.

Comparaison avec les cellules in vivo

Pour voir comment nos cellules induites se comparaient aux cellules méiotiques naturelles, nous avons créé un modèle de référence en utilisant des données provenant de tissus gonadiques fœtaux et adultes. Nous avons ensuite vérifié où nos cellules traitées s'intégraient dans ce modèle. Il s'est avéré que la plupart de nos cellules ressemblaient davantage à des cellules méiotique provenant des ovaires qu'à celles des testicules, ce qui était quelque peu attendu compte tenu de la nature des hiPSCs utilisées.

Conclusion

Notre approche offre un moyen fiable et rapide d'induire la méiose dans des cellules humaines dans un environnement contrôlé. L'accent mis sur la surexpression de facteurs spécifiques tout en réduisant les effets inhibiteurs s'est avéré efficace pour générer des cellules méiotique. Bien que nous ayons obtenu des résultats prometteurs, l'efficacité de la production de cellules méiotique à un stade tardif reste un défi. Les travaux futurs pourraient impliquer des techniques plus précises pour contrôler l'expression génique ou intégrer les cellules induites dans des systèmes qui imitent mieux l'environnement naturel des cellules germinales en développement dans le corps.

En facilitant l'étude de la méiose humaine, cette technique ouvre de nombreuses possibilités pour la recherche et les applications médicales, y compris des traitements potentiels pour l'infertilité et la compréhension des variations génétiques dans la reproduction humaine. À mesure que la recherche continue, il y a l'espoir que ces percées éclaircissent davantage les complexités de la reproduction humaine et mènent à de nouvelles avancées médicales.

Source originale

Titre: Induction of Meiosis from Human Pluripotent Stem Cells

Résumé: An in vitro model of human meiosis would accelerate research into this important reproductive process and development of therapies for infertility. We have developed a method to induce meiosis starting from male or female human pluripotent stem cells. We demonstrate that DNMT1 inhibition, retinoid signaling activation, and overexpression of regulatory factors (anti-apoptotic BCL2, and pro-meiotic HOXB5, BOLL, or MEIOC) rapidly activates meiosis, with leptonema beginning at 6 days, zygonema at 9 days, and pachynema at 12 days. Immunofluorescence microscopy shows key aspects of meiosis, including chromosome synapsis and sex body formation. The meiotic cells express genes similar to meiotic oogonia in vivo, including all synaptonemal complex components and machinery for meiotic recombination. These findings establish an accessible system for inducing human meiosis in vitro.

Auteurs: George Church, M. D. Pierson Smela, J. Adams, C. Ma, L. Breimann, U. Widocki, T. Shioda

Dernière mise à jour: 2024-06-01 00:00:00

Langue: English

Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.05.31.596483

Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.05.31.596483.full.pdf

Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.

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