Faire avancer l'étude de la régulation génétique
Recherche sur la façon dont les facteurs de transcription interagissent avec l'ADN pour réguler l'expression des gènes.
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Table des matières
- Stratégies pour étudier le génome régulateur
- Comprendre les Mutations et leur impact sur l'expression des gènes
- Développer un pipeline computationnel
- Analyser les paramètres expérimentaux et biologiques
- Importance de la taille de la bibliothèque et des taux de mutation
- Évaluer le bruit biologique et ses effets
- Le défi des sites de liaison qui se chevauchent
- Le rôle des Inducteurs dans la régulation génique
- Futurs axes de recherche
- Conclusion
- Source originale
Ces dernières années, les avancées dans la technologie de séquençage ont conduit à une énorme augmentation des données génomiques. Cependant, notre compréhension de la façon dont les gènes sont contrôlés, en particulier comment les Facteurs de transcription interagissent avec l'ADN pour réguler l'expression des gènes, n'a pas suivi le rythme. C'est même vrai pour des organismes bien étudiés comme E. coli, où de nombreux promoteurs de gènes ne sont pas bien documentés. Sans annotations précises sur où les facteurs de transcription se lient, il devient difficile de comprendre comment les cellules réagissent à différents signaux environnementaux et comment cela influence leur comportement et leur évolution.
Stratégies pour étudier le génome régulateur
Une manière efficace d'étudier les éléments régulateurs du génome, c'est les Essais de rapporteurs massivement parallèles (MPRAs). Ces essais permettent aux chercheurs d'évaluer plusieurs séquences en même temps pour voir comment elles affectent l'expression des gènes. Les chercheurs créent une bibliothèque de séquences, qui peut comprendre des morceaux d'ADN du génome ou des versions modifiées de séquences existantes.
Il y a deux techniques principales utilisées dans les MPRAs pour mesurer comment ces séquences régulent l'expression des gènes. La première technique consiste à trier les cellules en fonction de la quantité d'un gène rapporteur fluorescent qu'elles produisent. Après le tri, les chercheurs peuvent déterminer quelles séquences sont liées à une expression élevée ou faible. La seconde technique utilise le séquençage ARN pour compter combien de fois chaque séquence apparaît, servant de mesure quantitative des niveaux d'expression.
Notre équipe a développé une technique appelée Reg-Seq, qui utilise le séquençage ARN pour analyser les éléments régulateurs de nombreux promoteurs dans E. coli. L'objectif est de mieux comprendre les annotations régulatrices de l'ensemble des génomes bactériens.
Mutations et leur impact sur l'expression des gènes
Comprendre lesLes mutations dans les séquences régulatrices peuvent affecter la façon dont les facteurs de transcription se lient à l'ADN, ce qui peut entraîner des changements dans la quantité de produit génique fabriqué. Pour identifier ces sites de liaison cruciaux, nous nous concentrons sur les mutations ayant un effet significatif sur les niveaux d'expression. Une façon de faire ça, c'est de calculer une mesure appelée information mutuelle, qui nous aide à identifier les sites qui sont fortement corrélés avec des changements d'expression.
En traçant ces informations sur un promoteur, on peut visualiser les zones susceptibles d'être des sites de liaison pour les facteurs de transcription. Notre recherche implique la création d'un pipeline computationnel qui simule les processus de MPRA, nous aidant à prédire comment des changements dans divers facteurs pourraient influencer les résultats que nous mesurons.
Développer un pipeline computationnel
Le pipeline computationnel que nous avons établi utilise des principes de la mécanique statistique pour générer des ensembles de données synthétiques qui imitent les résultats expérimentaux des MPRAs. Cela nous permet d'explorer comment des changements dans les conditions expérimentales, comme les taux de mutation ou le nombre de facteurs de transcription, pourraient influencer nos résultats.
Comprendre ces paramètres est crucial car cela nous aide à concevoir de meilleures expériences et à élaborer des aperçus plus clairs sur la façon dont les gènes sont régulés. Par exemple, nous examinons comment la concentration des facteurs de transcription ou la présence de mutations peuvent changer notre manière d'interpréter les données d'expression.
Analyser les paramètres expérimentaux et biologiques
Après avoir mis en place notre pipeline computationnel, nous pouvons manipuler différents facteurs biologiques et observer comment ces changements affectent notre compréhension de la liaison des facteurs de transcription. Nous examinons des facteurs comme l'énergie de liaison des facteurs de transcription et comment varier le nombre de facteurs de transcription présents peut impacter l'expression génique.
Dans le cadre de cette analyse, nous regardons comment fluctuer le nombre de facteurs de transcription ou de RNAP (RNA polymérase) peut créer du bruit dans nos données, rendant plus difficile l'identification des véritables sites de liaison.
Importance de la taille de la bibliothèque et des taux de mutation
La taille de la bibliothèque contenant des variantes de séquences et le taux de mutations sont significatifs pour déterminer la clarté de nos résultats. En faisant varier systématiquement ces facteurs, nous pouvons analyser leur effet sur l'empreinte d'information, ce qui aide à identifier avec précision où se lient les facteurs de transcription.
Nous explorons comment le bruit peut être minimisé en augmentant la taille de la bibliothèque, ce qui peut aider à séparer les signaux réels des fluctuations aléatoires. C'est essentiel pour améliorer notre compréhension des sites de liaison des facteurs de transcription.
Évaluer le bruit biologique et ses effets
Le bruit biologique provient de variations dans les niveaux de biomolécules et peut affecter le rapport signal/bruit de nos résultats. Nous étudions comment le bruit intrinsèque (provenant des variations aléatoires dans la transcription) et le bruit extrinsèque (provenant des différences entre cellules dans les comptes de molécules) peuvent affecter la clarté de l'empreinte d'information.
Nos résultats suggèrent que, bien que ces sources de bruit réduisent la force du signal, elles ne nous empêchent pas d'identifier des sites de liaison importants, soulignant la robustesse de notre approche MPRA.
Le défi des sites de liaison qui se chevauchent
Un autre défi pour identifier les sites de liaison se présente lorsque deux sites se chevauchent, comme c'est souvent le cas avec les répresseurs et RNAP. Lorsque cela se produit, les signaux issus des deux événements de liaison peuvent interférer l'un avec l'autre, ce qui mène à une ambiguïté dans les données.
En créant des ensembles de données synthétiques qui tiennent compte des sites de liaison qui se chevauchent, nous pouvons mieux comprendre comment cette complexité affecte notre capacité à interpréter les résultats. Ces insights aideront à orienter de futures expériences visant à distinguer les signaux qui se chevauchent.
Inducteurs dans la régulation génique
Le rôle desDans de nombreux cas, l'activité des facteurs de transcription peut être régulée par des inducteurs, qui peuvent soit aider, soit entraver leur liaison à l'ADN. Par exemple, lorsque l'allolactose se lie au répresseur Lac, cela change la capacité du répresseur à réguler l'expression génique.
Nos études se concentrent sur comment varier la concentration des inducteurs impacte la dynamique de liaison et, par conséquent, l'expression globale des gènes. C'est un domaine de recherche important car cela a le potentiel de révéler de nouveaux aspects de la régulation génique.
Futurs axes de recherche
Bien que notre pipeline computationnel ait prouvé son efficacité pour générer des aperçus sur les mécanismes de régulation des gènes, il y a plusieurs domaines pour de futures recherches. Nous visons à incorporer les interactions génétiques dans nos modèles, puisque comprendre comment différents gènes s'influencent mutuellement pourrait éclairer les complexités de la régulation génique.
De plus, bien que nous concentrions actuellement sur les facteurs d'initiation de la transcription, il est nécessaire d'inclure des facteurs qui influencent l'élongation et la terminaison de la transcription. Cette expansion fournira une vue plus complète de la régulation des gènes.
En conclusion, notre recherche utilise une combinaison de modélisation computationnelle et de données expérimentales pour améliorer notre compréhension de la régulation des gènes. En analysant comment différents facteurs influencent la liaison des facteurs de transcription et l'expression des gènes, nous espérons approfondir notre connaissance des réponses cellulaires à divers signaux et des implications évolutives de ces processus.
Conclusion
Le domaine de la génomique évolue rapidement, et avec lui, notre compréhension de la régulation transcriptionnelle. En intégrant des approches computationnelles avec des techniques expérimentales, nous pouvons obtenir des aperçus précieux sur les interactions complexes qui régissent l'expression des gènes. À l'avenir, notre objectif est de peaufiner nos méthodologies et d'élargir nos investigations pour capturer plus précisément les subtilités des réseaux régulateurs, contribuant ainsi à une compréhension plus profonde de la biologie au niveau moléculaire.
Les défis auxquels nous faisons face, du bruit dans nos données aux sites de liaison qui se chevauchent et à l'influence de divers facteurs, nécessitent des solutions novatrices et une amélioration continue de nos approches. À mesure que nous faisons avancer nos outils computationnels et nos techniques expérimentales, nous sommes impatients de découvrir de nouvelles couches de complexité dans la régulation des gènes et les principes sous-jacents qui influencent le comportement cellulaire.
Grâce à des efforts collaboratifs et à la recherche interdisciplinaire, nous pouvons ouvrir la voie à des percées significatives dans notre compréhension du paysage génomique, menant à des applications en médecine, en biotechnologie et en biologie évolutive. Alors que nous nous efforçons d'assembler le puzzle complexe de la régulation des gènes, nous restons déterminés à percer les mystères qui résident dans nos génomes.
Titre: Deciphering regulatory architectures from synthetic single-cell expression patterns
Résumé: For the vast majority of genes in sequenced genomes, there is limited understanding of how they are regulated. Without such knowledge, it is not possible to perform a quantitative theory-experiment dialogue on how such genes give rise to physiological and evolutionary adaptation. One category of high-throughput experiments used to understand the sequence-phenotype relationship of the transcriptome is massively parallel reporter assays (MPRAs). However, to improve the versatility and scalability of MPRA pipelines, we need a "theory of the experiment" to help us better understand the impact of various biological and experimental parameters on the interpretation of experimental data. These parameters include binding site copy number, where a large number of specific binding sites may titrate away transcription factors, as well as the presence of overlapping binding sites, which may affect analysis of the degree of mutual dependence between mutations in the regulatory region and expression levels. To that end, in this paper we create tens of thousands of synthetic single-cell gene expression outputs using both equilibrium and out-of-equilibrium models. These models make it possible to imitate the summary statistics (information footprints and expression shift matrices) used to characterize the output of MPRAs and from this summary statistic to infer the underlying regulatory architecture. Specifically, we use a more refined implementation of the so-called thermodynamic models in which the binding energies of each sequence variant are derived from energy matrices. Our simulations reveal important effects of the parameters on MPRA data and we demonstrate our ability to optimize MPRA experimental designs with the goal of generating thermodynamic models of the transcriptome with base-pair specificity. Further, this approach makes it possible to carefully examine the mapping between mutations in binding sites and their corresponding expression profiles, a tool useful not only for better designing MPRAs, but also for exploring regulatory evolution. Author summaryWith the rapid advancement of sequencing technology, there has been an exponential increase in the amount of data on the genomic sequences of diverse organisms. Nevertheless, deciphering the sequence-phenotype mapping of the genomic data remains a formidable task, especially when dealing with non-coding sequences such as the promoter. In current databases, annotations on transcription factor binding sites are sorely lacking, which creates a challenge for developing a systematic theory of transcriptional regulation. To address this gap in knowledge, high-throughput methods such as massively parallel reporter assays (MPRAs) have been employed to decipher the regulatory genome. In this work, we make use of thermodynamic models to computationally simulate MPRAs in the context of transcriptional regulation and produce thousands of synthetic MPRA datasets. We examine how well typical experimental and data analysis procedures of MPRAs are able to recover common regulatory architectures under different sets of experimental and biological parameters. By establishing a dialogue between high-throughput experiments and a physical theory of transcription, our efforts serve to both improve current experimental procedures and enhancing our broader understanding of the sequence-function landscape of regulatory sequences.
Auteurs: Rosalind Wenshan Pan, T. Roeschinger, K. Faizi, H. Garcia, R. Phillips
Dernière mise à jour: 2024-06-05 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.01.28.577658
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.01.28.577658.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.
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