Faire avancer la production de protéines avec le clonage 4G
Une nouvelle méthode de clonage simplifie la production et la purification des protéines dans les labos.
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Table des matières
- Choisir La Bonne Méthode
- Protéines Complexes
- Défis du Clonage Traditionnel
- Nouvelles Techniques de Clonage
- Introduction du Clonage 4G
- Éléments de Construction pour le Clonage
- Tester l’Efficacité de l’Assemblage
- Applications dans l’Expression Protéique
- Exploration d’Autres Complexes
- Avantages du Clonage 4G
- Conclusion
- Source originale
Produire et purifier des protéines en labo, c’est super important dans plein de domaines scientifiques. Avoir assez de ces protéines avec le bon niveau de pureté, ça peut prendre un temps fou et beaucoup d’efforts. Les scientifiques doivent souvent tester plusieurs méthodes avant de trouver celle qui fonctionne bien.
Choisir La Bonne Méthode
Avant de commencer à produire une protéine, les scientifiques doivent prendre deux décisions clés. La première, c’est de choisir un hôte approprié pour l’expression. Les bactéries, surtout E. coli, sont souvent le premier choix parce qu’elles sont pas chères, elles poussent vite et nécessitent du matos relativement simple. Mais certaines protéines d’organismes eucaryotes ont besoin de systèmes plus complexes pour un bon repliement et des modifications. Dans ces cas-là, utiliser des cellules eucaryotes peut être mieux.
La deuxième décision, c’est de choisir une étiquette d’affinité. Une étiquette d’affinité, c’est une partie de protéine qui aide dans le processus de purification. La bonne étiquette permet aux scientifiques de purifier la protéine avec moins d’étapes tout en gardant sa structure et sa fonction.
Protéines Complexes
Pour les protéines faites de plusieurs sous-unités, chaque sous-unité peut être produite à partir de vecteurs séparés ou tout rassembler en un seul. Pour les complexes plus petits, utiliser des vecteurs séparés peut marcher, mais pour les assemblages plus grands, c’est mieux de les exprimer tous à partir d’un seul vecteur. Des développements récents ont introduit des systèmes qui facilitent la génération de tels vecteurs pour différents types de cellules.
Cependant, créer ces complexes peut être compliqué, nécessitant plein d’étapes pour combiner les composants individuels. Changer des composants plus tard peut aussi être un défi.
Défis du Clonage Traditionnel
Les méthodes de clonage traditionnelles consistent à couper l’ADN et à le relier, ce qui est souvent un processus long. C’est particulièrement vrai quand on traite des protéines multi-sous-unités, car ça demande beaucoup de manipulation et d’étapes de purification.
Nouvelles Techniques de Clonage
Les nouvelles méthodes ont rendu le clonage plus facile et rapide. Une de ces techniques, c’est le Clonage Golden Gate, qui utilise des enzymes spécifiques pour couper l’ADN à certains endroits, permettant de combiner des morceaux dans l’ordre désiré. Le processus se fait en une étape, et le produit final n’a pas besoin d’être séquencé si toutes les parties ont été vérifiées avant.
Une autre méthode, appelée assemblage Gibson, permet aux scientifiques de construire un morceau d’ADN cible à partir de plusieurs fragments en une seule étape. Chaque morceau doit être vérifié au niveau des jonctions pour assurer l’exactitude.
Bien que ces méthodes aient été efficaces, elles nécessitent souvent plusieurs jours pour être complètes et impliquent des étapes de purification compliquées.
Introduction du Clonage 4G
Pour améliorer les méthodes existantes, les scientifiques ont développé une nouvelle stratégie appelée « Assemblage Gibson guidé par Golden Gate », ou clonage 4G. Cette nouvelle approche permet l’assemblage rapide de plusieurs cassettes d’expression génique en une seule journée, avec un temps d’intervention minimal.
L’avantage principal de ce système, c’est qu’il permet aux scientifiques de créer des vecteurs d’expression flexibles qui peuvent facilement être modifiés pour inclure de nouvelles étiquettes ou des séquences régulatrices. Cela peut être appliqué dans différents systèmes, y compris les bactéries et les cellules eucaryotes.
Éléments de Construction pour le Clonage
La première étape du clonage 4G, c’est de créer des éléments de construction qui peuvent être facilement combinés. Ces éléments incluent des morceaux comme des gènes, des étiquettes, et des promoteurs. Chaque bloc de construction est fabriqué dans un ensemble de vecteurs donneurs et est conçu pour fonctionner ensemble pendant le processus d’assemblage.
Une fois que les blocs de construction sont prêts, plusieurs cassettes d’expression génique peuvent être assemblées en une journée, permettant aux chercheurs de tester plein de combinaisons. Comme ça, si les essais initiaux ne donnent pas de bons résultats, de nouvelles combinaisons peuvent être rapidement créées sans tout recommencer.
Tester l’Efficacité de l’Assemblage
Des efforts ont été faits pour tester l’efficacité de création de ces vecteurs d’expression multi-gènes. Le nombre total de plasmides réussis a diminué avec le nombre de cassettes incluses, mais une quantité correcte de clones a été obtenue, indiquant que la méthode d’assemblage est fiable.
Applications dans l’Expression Protéique
Avec la méthode de clonage 4G, les chercheurs ont créé des constructions d’expression pour divers complexes protéiques. Par exemple, ils ont étudié le complexe protéique Smc5/6 des levures, qui est composé de plusieurs sous-unités essentielles pour la structure et la fonction des chromosomes.
Au départ, ils ont essayé de l’exprimer dans des bactéries mais c’était compliqué. Ils ont ensuite tourné leur attention vers des cellules eucaryotes, comme des cellules d’insectes et de mammifères, qui offraient de meilleures conditions pour l’expression des protéines.
En créant de nouveaux vecteurs spécifiquement conçus pour ces hôtes, les chercheurs ont pu produire le complexe protéique efficacement. Ils ont découvert que différentes étiquettes d’affinité pouvaient être testées pour optimiser le processus d’expression, menant à une purification réussie en une étape.
Exploration d’Autres Complexes
Un autre cas concernait le complexe JetABC des bactéries, qui est important pour la défense des bactéries contre les phages. En appliquant la même stratégie de clonage, les chercheurs ont pu examiner comment différentes étiquettes avaient un impact sur le rendement du complexe protéique.
Les résultats ont montré que le choix de l’étiquette et sa position avaient un impact significatif sur le rendement protéique. Certaines étiquettes fonctionnaient mieux que d’autres, et la capacité de comparer plusieurs configurations a permis aux chercheurs d’optimiser leur approche efficacement.
Avantages du Clonage 4G
Le système de clonage 4G est unique pour plusieurs raisons :
- Efficacité : Il permet un assemblage rapide de plusieurs cassettes d’expression génique en une seule journée.
- Manipulations Minimisées : Il réduit le besoin d’étapes de purification étendues, économisant temps et efforts.
- Flexibilité : De nouvelles séquences régulatrices et parties protéiques peuvent être intégrées facilement, permettant la création parallèle de divers plasmides.
- Erreurs Réduites : En utilisant des éléments donneurs vérifiés, le risque d’introduire des erreurs pendant le processus d’assemblage est minimisé.
Conclusion
Le développement de la stratégie de clonage 4G améliore considérablement la capacité de produire et de purifier des protéines en laboratoire. Ça simplifie un processus généralement complexe et long, facilitant la création et la modification de constructions géniques pour diverses applications.
En permettant des variations rapides des constructions d’expression, les chercheurs peuvent s’adapter à de nouveaux défis dans la production de protéines, menant finalement à des avancées plus rapides dans l’étude des complexes protéiques et leurs fonctions dans les systèmes biologiques. Cette nouvelle méthode a le potentiel de transformer la manière dont les scientifiques abordent les projets d’expression protéique, rendant le processus plus efficace et efficace.
Titre: 4G cloning: rapid gene assembly for expression of multisubunit protein complexes in diverse hosts
Résumé: Multi-subunit protein complexes are at the heart of many cellular processes, and studying their biochemical activities and structures in vitro requires their reconstitution by recombinant expression and purification. Obtaining targets at sufficient purity and scale typically requires the screening of several protein variants and expression hosts. Existing cloning strategies allow to produce constructs for co-expression of proteins, but are often time-consuming, labour-intensive, host-specific, or involving error-prone assembly steps. Here we present a unique set of vectors together with a novel assembly strategy designed to overcome these limitations. It allows for the generation of expression constructs for multi-subunit protein complexes for various hosts in a single cloning step. Its modular nature allows the system to be easily extended to target additional expression hosts or to include new tags or regulatory sequences. As a proof of principle, we present the parallel construction of expression vectors for several Structural Maintenance of Chromosomes (SMC) complexes, allowing us to devise strategies for the recombinant production of these targets in bacteria, insect cells, and human cells, respectively. This work will help laboratories working on protein complexes to streamline their workflow, increase their productivity and improve the quality of the purified material.
Auteurs: Stephan Gruber, M. Taschner, J. B. Dickinson, F. Roisne-Hamelin
Dernière mise à jour: 2024-06-17 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.17.599261
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.17.599261.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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