Une étude révèle le comportement de la polymérase d'ADN avec des brins modifiés par PST
L'examen des interactions des ADN polymérases avec l'ADN modifié par PST met en évidence des comportements de réplication inattendus.
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Table des matières
Les ADN polymérases sont des enzymes super importantes qui aident à faire des copies de l'ADN. Elles ont des fonctions spéciales pour s'assurer qu'elles construisent l'ADN correctement. Si elles se plantent, une seule erreur peut être grave pour les organismes vivants. Pour éviter les erreurs, ces polymérases ont une fonction de relecture qui vérifie si les brins d'ADN sont bien appariés. S'il y a une erreur, cette capacité de relecture permet à l'enzyme de corriger le tir, garantissant que la copie de l'ADN se passe bien.
Pour améliorer la durabilité des brins d'ADN, les scientifiques utilisent souvent des modifications chimiques spéciales. Une de ces modifications s'appelle le lien phosphorothioate (PST), qui aide l'ADN à résister à la décomposition par des enzymes appelées nucléases. Ces brins d'ADN modifiés, notamment les oligonucleotides PST, sont utilisés dans diverses technologies médicales, y compris des thérapies qui silencent des gènes. Cependant, ces modifications peuvent changer la façon dont l'ADN interagit avec les enzymes de copie, ce qui rend crucial d'étudier ces interactions.
Étonnamment, il n'y a pas eu beaucoup de recherches sur le comportement de ces oligonucleotides PST quand ils rencontrent différents ADN polymérases à l'intérieur ou à l'extérieur des cellules. Ces brins modifiés PST peuvent se lier partiellement à un type d'ADN appelé ADN génomique ou même à l'ADN circulaire trouvé dans les cellules, qui est souvent associé au cancer. Ça peut créer des situations où l'ADN modifié apparaît pour la polymérase comme un brin normal, malgré des différences.
Recherche Actuelle
Cette étude examine comment certaines ADN polymérases gèrent l'ADN modifié PST, surtout quand il y a des erreurs aux extrémités de ces brins. On a regardé comment ces polymérases interagissent avec des amorces d'ADN PST qui ont des erreurs de tailles variées, d'une seule base à des séquences plus longues, en plus de modèles d'ADN circulaires. Notre but était de voir si l'ADN avec des erreurs pouvait quand même être copié efficacement.
On a utilisé différents types de polymérases pour voir comment elles se débrouillaient avec des amorces d'ADN PST et non modifiées. On a trouvé que certaines polymérases pouvaient passer ces erreurs de manière inattendue, leur permettant d'étendre le brin d'ADN même s'il y avait des erreurs. Ce comportement a été observé aussi bien avec des erreurs identiques que non identiques, indiquant un processus unique se produisant avec l'ADN modifié PST.
Matériaux et Méthodes
On a acheté divers oligonucleotides, qui sont de courts brins d'ADN, chez des fournisseurs. Ces oligonucleotides ont été préparés avec des modifications spécifiques et utilisés dans nos expériences sans besoin de nettoyage supplémentaire. Des enzymes comme la ligase ADN et les polymérases, qui aident à assembler et copier l'ADN, ont également été sourcées auprès de fournisseurs fiables.
On a créé de l'ADN circulaire à partir de ces oligonucleotides en utilisant des réactions spécifiques, ce qui nous a permis de tester combien bien les polymérases pouvaient répliquer avec des amorces modifiées PST. Les expériences consistaient à mélanger ces amorces avec l'ADN circulaire et les polymérases pour voir comment efficacement l'ADN était copié. On a bien observé comment les enzymes réagissaient aux bases mal appariées, surtout pour les oligonucleotides PST.
Résultats
Nos expériences ont montré que les polymérases pouvaient continuer à copier l'ADN même quand des erreurs étaient présentes, surtout avec des amorces modifiées PST. L'activité des polymérases variait selon le type d'erreur et la polymérase spécifique utilisée, mettant en avant une propriété intéressante des oligonucleotides PST.
On a remarqué que des erreurs aussi petites qu'une base pouvaient être contournées, conduisant à des niveaux inattendus de copie d'ADN. Ce phénomène était constant à travers différentes polymérases, suggérant que les modifications apportées à l'ADN pourraient influencer la façon dont les polymérases reconnaissent et traitent ces brins.
De plus, on a testé différentes combinaisons d'erreurs et observé comment elles affectaient la réaction. Les résultats ont indiqué que des erreurs identiques et non identiques pouvaient conduire à une réplique réussie de l'ADN, augmentant notre compréhension de la façon dont ces brins modifiés se comportent.
Mécanismes de Blocage
Pour approfondir notre enquête sur la façon dont le processus de copie pourrait être contrôlé, on a exploré une méthode utilisant des séquences bloqueuses. Ces bloqueurs sont conçus pour se lier aux régions mal appariées, pouvant potentiellement arrêter les polymérases de continuer le processus de copie. En faisant ça, on voulait comprendre comment ces bloqueurs peuvent réguler l'activité de contournement des erreurs.
Nos découvertes ont révélé que la présence des séquences bloqueuses réduisait considérablement la capacité des polymérases à répliquer l'ADN avec des erreurs. En enlevant les bloqueurs, la copie de l'ADN a repris, indiquant un mécanisme de type interrupteur qui pourrait être utilisé pour contrôler le processus. Cette découverte ouvre la voie à l'utilisation de ces mécanismes dans diverses applications, comme les technologies de biosensibilisation.
Implications pour les Thérapies
Les résultats de notre étude ont des implications importantes pour l'utilisation des oligonucleotides modifiés PST dans les thérapies. Étant donné que ces brins modifiés peuvent interagir avec l'ADN naturel dans le corps, toute copie non intentionnelle pourrait poser des problèmes significatifs. Si les polymérases amplifient par erreur ces séquences modifiées, cela pourrait entraîner une augmentation de certains gènes dans les cellules, contribuant possiblement au cancer ou à d'autres maladies.
Comprendre comment ces oligonucleotides PST interagissent avec différents types d'ADN est crucial pour garantir que les futures thérapies soient sûres et efficaces. Notre recherche met en avant la nécessité de surveiller attentivement comment ces modifications affectent les voies de réplication de l'ADN dans le corps.
Directions Futures
En conclusion, cette étude éclaire les propriétés uniques de l'ADN modifié PST et ses interactions avec les ADN polymérases. On a observé une capacité surprenante de ces polymérases à contourner les erreurs lors de la réplication, ce qui ouvre de nouvelles possibilités d'utilisation de ce mécanisme dans des applications de biocomputation et de détection.
En exploitant cette connaissance, on peut concevoir des outils moléculaires plus efficaces et polyvalents pour les diagnostics et les thérapies. Des recherches supplémentaires seront axées sur la compréhension des mécanismes sous-jacents de ces interactions et comment elles peuvent être utilisées dans des applications concrètes, en particulier dans la régulation génétique et la thérapie des maladies.
Alors qu'on avance, il sera important de continuer à explorer la relation entre les modifications PST et leurs effets sur les systèmes biologiques pour réaliser pleinement leur potentiel en médecine et en technologie.
Titre: An anomalous 3'-terminal phosphorothioated mismatch bypass activity and its application as a binary molecular switch
Résumé: Phosphorothioated (PST) oligonucleotides are increasingly being used in RNA silencing, antisense, and biosensing applications. However, the possibilities and consequences of their desultory interactions with other possible nucleic acids and DNA polymerases inside the cell remain inadequately characterized. In this study, we report the discovery of an unusual terminal mismatch bypass activity involving 3'-PST containing DNA primers and certain strand displacement DNA polymerases. Using rolling circle DNA amplification, we have identified that strand displacement DNA polymerases such as phi29 and BST large fragment (LF) can bypass 3'-terminal PST mismatches upto 1 - 20 nt length. Next, we explore the length and sequence dependence of this unusual attribute, incubation in near-ambient and 60 - 65{degrees}C temperatures, and measures to blockade or modulate this mismatch bypass activity to create a binary fully nucleic acid-based and non-photocontrolled molecular switch (the first of its kind). After proposing possible underlying mechanisms for this activity, we discuss its potential consequences and applications.
Auteurs: Souradyuti Ghosh, S. Kumar, H. S. Gariya, C. Sharma, S. Parveen, V. K. Nair, M. Sengupta
Dernière mise à jour: 2024-07-27 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.27.605420
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.27.605420.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.
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