RAM-FISH : Une nouvelle façon d'étudier l'ARN
RAM-FISH simplifie la détection de l'ARN, aidant les scientifiques à mieux comprendre l'expression des gènes.
Tirtha Das Banerjee, Joshua Raine, Ajay S. Mathuru, Kok Hao Chen, Antónia Monteiro
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Table des matières
- Techniques de Détection de l'ARN
- Méthodes Basées sur le Séquençage
- Méthodes Basées sur l'Imagerie
- Améliorations des Méthodes de Localisation de l'ARN
- RAM-FISH : Une Nouvelle Solution
- Flux de Travail de RAM-FISH
- Préparation des Sondes
- Applications Pratiques de RAM-FISH
- Recherche sur les Papillons
- Études sur le Cerveau de Poisson-Zèbre
- Défis et Analyse de Robustesse
- Conclusion
- Source originale
- Liens de référence
Les êtres vivants composés de plein de cellules, comme les animaux et les plantes, ont des systèmes compliqués à l'intérieur. Ces systèmes sont contrôlés par de toutes petites molécules appelées ARN. La manière dont ces molécules d'ARN apparaissent dans les cellules peut nous en dire beaucoup sur le développement des tissus et l'apparition des maladies. Beaucoup de scientifiques cherchent des moyens simples et fiables pour voir plusieurs molécules d'ARN dans les tissus sans trop de dérangements.
Pour étudier ces molécules d'ARN, les scientifiques ont besoin de méthodes qui fonctionnent bien et qui ne prennent pas trop de temps ou d'efforts. Ils veulent aussi s'assurer qu'ils peuvent examiner différents types d'échantillons sans trop de préparation. Les technologies récentes permettent aux scientifiques de vérifier l'ARN dans des cellules uniques tout en gardant la structure des tissus intacte. Il y a deux principales méthodes : une qui utilise le séquençage et une autre qui utilise des sondes colorées.
Techniques de Détection de l'ARN
Méthodes Basées sur le Séquençage
Les méthodes basées sur le séquençage impliquent de démonter et de lire les séquences d'ARN pour découvrir quels gènes sont actifs. Les techniques populaires incluent :
- Visium : Cette méthode permet une analyse spatiale de l'ARN dans les tissus, fournissant une carte de l'activité des gènes.
- Stereo-seq : Cette technique fonctionne de manière similaire mais a une approche différente pour capturer les données.
- Slide-seq : Cette méthode capture les signaux d'ARN en utilisant une configuration de diapositive spécifique.
Imagerie
Méthodes Basées sur l'Les méthodes basées sur l'imagerie utilisent des marqueurs fluorescents spéciaux pour indiquer où se trouve l'ARN et combien il y en a. Quelques techniques connues incluent :
- MERFISH : Cette méthode utilise plusieurs tours d'imagerie pour collecter des données sur de nombreuses molécules d'ARN à la fois.
- osmFISH : Elle aide à visualiser l'ARN de manière très détaillée.
- CosMx SMI : Cette approche innovante suit l'ARN dans des échantillons de tissus.
- STARmap : Cette technique produit des images haute résolution de l'emplacement de l'ARN dans les tissus.
- seq-FISH : Une autre méthode qui permet aux scientifiques de voir les signaux d'ARN très clairement.
- FISH&CHIPS : C'est une méthode plus récente qui fonctionne en complément d'autres techniques.
Bien que ces méthodes soient utiles, elles viennent souvent avec des problèmes comme des étapes de préparation compliquées, des coûts élevés et le risque de recevoir de faux signaux.
Améliorations des Méthodes de Localisation de l'ARN
Les scientifiques ont trouvé de meilleures façons d'amplifier les signaux et de réduire le bruit de fond. Des méthodes comme HCR3.0 et SABER-FISH ont rendu possible de voir les signaux plus clairement et de diminuer les interférences de fond. Cependant, ces techniques ont encore leurs propres problèmes, comme :
- Capacité limitée à gérer de nombreux cibles d'ARN en même temps.
- Chronologies expérimentales longues.
- Protocoles intensifs qui demandent une manipulation experte, ce qui peut mener à des erreurs.
Certaines nouvelles méthodes, comme cycleHCR et EASI-FISH, ont amélioré le nombre de cibles qu'elles peuvent gérer, mais elles nécessitent des configurations compliquées et ne sont pas faciles à utiliser pour tous les labos.
RAM-FISH : Une Nouvelle Solution
Voilà RAM-FISH ! Cette méthode combine des techniques avancées pour détecter efficacement plus de 30 cibles d'ARN en même temps. C'est plus rapide et plus simple que les anciennes méthodes, ce qui permet aux scientifiques de l'utiliser plus facilement. Avant, les chercheurs ont testé cette méthode sur des écailles de papillons et des cerveaux de poissons, et maintenant elle a été améliorée pour permettre plusieurs tours de détection.
Flux de Travail de RAM-FISH
Le flux de travail pour RAM-FISH est simple. Il commence par la préparation des échantillons de tissus, qui peut se faire soit manuellement soit en utilisant des systèmes automatisés. Après avoir rassemblé les tissus, les scientifiques les fixent et les rendent perméables. Ensuite, ils effectuent les tests eux-mêmes ou laissent les machines s'en charger.
Les étapes de base incluent :
- Collecte des Tissus : D'abord, les scientifiques prennent des échantillons de l'organisme, que ce soit un papillon ou un poisson.
- Fixation et Préparation : Les tissus sont traités pour faciliter le travail et garder les cellules intactes.
- Sondage de l'ARN : Ensuite, ils utilisent des sondes spéciales qui se lient à l'ARN d'intérêt. Après cela, ils utilisent des sondes supplémentaires pour amplifier les signaux qu'ils veulent voir.
- Imagerie : Enfin, les échantillons sont examinés sous un microscope spécial pour capturer les signaux d'ARN.
Dans la configuration manuelle, les étapes d'hybridation, de lavage et d'élimination des signaux se font principalement dans des plaques en verre ou de petits tubes. L'approche automatisée utilise un système fluidique pour rationaliser le processus, le rendant plus efficace.
Préparation des Sondes
Pour préparer des sondes pour la détection de l'ARN, les chercheurs ont créé des modèles Excel utiles. Ces modèles aident à concevoir des oligonucléotides qui peuvent se fixer à l'ARN spécifique qu'ils veulent étudier. Ils utilisent une séquence génétique à partir de bases de données et préparent les sondes pour s'assurer qu'elles se lient correctement.
Applications Pratiques de RAM-FISH
Recherche sur les Papillons
Une application excitante de RAM-FISH est d'examiner le développement des ailes de papillon. Les papillons ont des motifs de couleur uniques qui changent en grandissant. Les scientifiques ont étudié jusqu'à 33 gènes à différents stades de développement pour voir comment ils se comportent.
Par exemple :
- Wnt1, Wnt6 et Wnt10 : Ces gènes ont montré des motifs constants liés aux marges des ailes et aux taches, correspondant à des études antérieures.
- Cubitus interruptus (ci) : Ce gène a été trouvé dans certaines zones de l'aile, ce qui s'aligne avec les travaux précédents.
L'utilisation de RAM-FISH a permis aux chercheurs de voir à quel point l'expression génique est complexe durant le développement du papillon, aidant à comprendre leur croissance et leurs motifs de couleur.
Études sur le Cerveau de Poisson-Zèbre
Les larves de poisson-zèbre sont un autre bon exemple de RAM-FISH en action. En raison de leur structure simple et de leur transparence, les poissons-zèbres sont idéaux pour étudier comment les gènes fonctionnent dans le cerveau durant les premières étapes de la vie. Les chercheurs ont utilisé RAM-FISH pour vérifier comment certains gènes s'expriment dans leur cerveau, ce qui est important pour comprendre les comportements.
Par exemple, plusieurs gènes liés à la fonction nerveuse ont été examinés, montrant où et comment ils sont actifs. Cela aide à construire une image plus claire de la fonction et du développement du cerveau.
Défis et Analyse de Robustesse
Bien que RAM-FISH soit un outil puissant, les scientifiques devaient aborder certains défis, comme s'assurer que les signaux restent forts à travers plusieurs cycles de détection. Ils ont regardé spécifiquement le gène optomotor-blind (omb) pour analyser comment les signaux se dégradent avec le temps.
Pour tester la fiabilité de la méthode, ils ont comparé des images prises après différents tours de détection. Ils ont trouvé que bien qu'il puisse y avoir une certaine perte de signal, les motifs globaux restaient clairs, soutenant la robustesse de la méthode RAM-FISH.
Conclusion
RAM-FISH représente une avancée excitante dans le domaine de la détection et de la localisation de l'ARN. Elle fournit une manière plus simple, plus rapide et plus fiable d'étudier l'expression génétique dans divers organismes. Que ce soit pour percer les secrets du développement des ailes de papillon ou pour fournir des aperçus sur les cerveaux de poissons-zèbres, cette méthode a le potentiel de révolutionner la manière dont les scientifiques explorent le monde de l'expression génétique.
Dans le paysage en constante évolution de la recherche scientifique, RAM-FISH est prometteuse pour beaucoup de chercheurs à la recherche de méthodes efficaces pour dévoiler le monde fascinant de l'ARN et son rôle dans les processus de la vie. Avec cet outil dans leur arsenal, les scientifiques sont susceptibles de faire des découvertes qui amélioreront notre compréhension de la biologie, du développement et des maladies d'une manière que nous ne pouvons qu'anticiper.
Alors gardons l'œil ouvert ; qui sait quelles découvertes incroyables nous attendent avec cette nouvelle approche de l'étude de l'ARN !
Source originale
Titre: Spatial mRNA profiling using Rapid Amplified Multiplexed-FISH (RAM-FISH)
Résumé: Localizing multiple RNA molecules simultaneously in intact tissues and organs is valuable for gaining insights into possible gene-regulatory interactions underlying cell differentiation. Existing technologies for multiplexed RNA localization are expensive, computationally complex, have elaborate sample preparation steps, have size limitations, and require weeks of processing time. This limits the widespread use of such techniques in most labs. Here we describe a cost-effective methodology, Rapid Amplified Multiplexed-FISH (or RAM-FISH), based on Hybridization Chain Reaction 3.0 for localizing dozens of transcripts in the same sample. This methodology achieves multiplexing by localizing 3 genes per cycle to detect 30 or more genes within a few days. The method can be applied to fixed tissue sections, entire organs, or whole organisms such as larval Danio rerio, without extensive sample preparation steps. The automation used here can also be adapted to perform other amplification-based FISH. Here, we demonstrate its utility, flexibility, and versatility for gene expression analysis in two very different types of samples, Bicyclus anynana butterfly larval wings and intact 10-day-old Danio rerio fish larvae.
Auteurs: Tirtha Das Banerjee, Joshua Raine, Ajay S. Mathuru, Kok Hao Chen, Antónia Monteiro
Dernière mise à jour: 2024-12-12 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.12.06.627193
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.12.06.627193.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.
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