Comprendere il Ruolo della Proteina N nel SARS-CoV-2
Esaminando il comportamento e la rilevanza della proteina N nell'attività del virus COVID-19.
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Indice
SARS-CoV-2, il virus responsabile del COVID-19, ha portato a una crisi sanitaria significativa da quando è stato notato per la prima volta nel 2019. Il virus ha causato oltre 771 milioni di infezioni e ha portato a circa 7 milioni di morti in tutto il mondo. In risposta a questa crisi, sono stati sviluppati e distribuiti vaccini, che hanno ridotto notevolmente la gravità e la mortalità legate alla malattia. Tuttavia, il virus continua a evolversi negli esseri umani e negli animali, creando preoccupazioni che potremmo affrontare un'altra pandemia.
Trattamenti antivirali come il Paxlovid sono disponibili e possono aiutare a ridurre la gravità del COVID-19. Tuttavia, questi trattamenti devono essere somministrati presto dopo l'infezione e possono interagire con farmaci comuni. Inoltre, i trattamenti attuali non affrontano il long COVID, una condizione caratterizzata da sintomi persistenti che possono verificarsi anche dopo che l'infezione iniziale si è risolta.
Ruolo della Proteina N nel SARS-CoV-2
La proteina N (N) è la proteina più abbondante prodotta durante un'infezione da SARS-CoV-2 e gioca un ruolo fondamentale nel ciclo vitale del virus. All'interno del virus, N forma strutture con il materiale genetico virale, essenziali per il funzionamento del virus. Una volta che il virus entra in una cellula, N deve separarsi dall'RNA virale per consentire al virus di iniziare a usare la macchina cellulare per produrre più virus. N aiuta anche nella replicazione del materiale genetico del virus.
N ha alcune funzioni complesse; aiuta a organizzare il genoma virale e interagisce con le proteine necessarie per la replicazione. Inoltre, N gioca un ruolo nell'interazione del virus con il sistema immunitario dell'ospite regolando alcune risposte. Questa proteina può sia ridurre l'infiammazione abbassando certi segnali immunitari sia aumentare le risposte infiammatorie in altri modi. La sua capacità di separarsi in fasi è essenziale per molte di queste funzioni.
Struttura della Proteina N
N è composta da due parti ordinate principali, conosciute come domini, circondate da tre sezioni disordinate. Il dominio C-terminale (CTD) aiuta N a formare dimeri e anche a legarsi al materiale genetico, mentre il dominio N-terminale (NTD) interagisce specificamente con l'RNA. L'area che connette questi due domini contiene parti che possono essere modificate da cambiamenti chimici, influenzando il comportamento e l'interazione di N.
Negli studi di laboratorio, i ricercatori hanno dimostrato che N può impacchettare l'RNA etichettato con marcatori fluorescenti in complessi. Questi studi hanno anche rivelato che N forma grandi assemblaggi che si comportano in modo diverso rispetto ai semplici dimeri della proteina.
Indagine sul Comportamento della Proteina N
Per capire come si comporta N in presenza di RNA, i ricercatori hanno esaminato come N interagisce con brevi filamenti di RNA. Hanno scoperto che per studiare queste interazioni, hanno utilizzato un tipo specifico di RNA contenente una sequenza di 20 timidine, nota come dT20. Questa lunghezza è stata scelta perché si è scoperto che era il minimo necessario per innescare efficacemente l'assemblaggio con N. I ricercatori hanno etichettato l'RNA con marcatori fluorescenti per tracciare le interazioni.
Negli esperimenti, gli scienziati hanno preparato diverse concentrazioni di N e dell'RNA etichettato. Il loro obiettivo era osservare come interagissero in diverse condizioni. I loro risultati indicavano che i complessi si formavano quando la quantità di RNA e N era in un certo rapporto.
Osservando la fluorescenza, hanno notato che a un rapporto specifico di dT20 a N, c'erano cambiamenti significativi nella luce emessa, indicando che si stavano verificando interazioni forti. Lo studio suggeriva che a questo rapporto, la proteina N stava probabilmente formando complessi più grandi, non solo semplici dimeri come inizialmente previsto.
Natura Dinamica dei Complessi della Proteina N
I ricercatori hanno anche scoperto che gli assemblaggi della proteina N potrebbero cambiare nel tempo, crescendo o riducendo le dimensioni a seconda dell'ambiente circostante. Alterando la concentrazione di N o RNA, potevano disturbare gli assemblaggi. Il fatto che i cambiamenti nei complessi di N potessero essere osservati in un breve periodo suggerisce che siano piuttosto dinamici e reattivi al loro ambiente.
In particolare, hanno notato che aggiungere N o RNA in eccesso poteva portare alla disassemblaggio dei complessi, un comportamento che potrebbe essere rilevante in contesti biologici.
Separazione di fase liquido-liquido
Una scoperta significativa è stata che la proteina N era capace di separazione di fase liquido-liquido. Questo significa che sotto certe condizioni, potrebbe separarsi da una soluzione per formare aree distinte in cui la proteina si raccoglie. Questo è stato osservato in campioni in cui sono stati mantenuti rapporti specifici di N e RNA.
Quando questi complessi si formavano, i ricercatori hanno notato un aumento della torbidità, rendendo i campioni opachi, il che indicava la presenza di queste aree separate. I campioni mostravano cambiamenti straordinari nel loro aspetto in base ai rapporti di N e RNA.
Man mano che studiavano queste aree separate in fasi, è diventato evidente che erano dinamiche, il che significa che la proteina N e l'RNA fluivano e si riarrangiavano costantemente all'interno delle aree condensate.
Importanza delle Interazioni Proteina-Proteina
L'autoassociazione della proteina N è stata esaminata anche attraverso esperimenti di incrociamento, in cui i ricercatori miravano ad analizzare come le molecole di N interagiscono tra loro. I risultati hanno mostrato che anche senza RNA, N poteva formare vari stati oligomerici, indicando che N ha una tendenza naturale ad associarsi con altre molecole di N. La presenza di acido nucleico ha ulteriormente aumentato la formazione di cluster proteici più grandi.
Gli esperimenti hanno rivelato che le interazioni tra le proteine N erano significative nel regolare il comportamento di fase. Quando l'RNA era presente, la multimerizzazione di N aumentava, suggerendo una relazione cooperativa tra l'RNA e N per una separazione di fase stabile.
Conclusione
In sintesi, lo studio della proteina N fornisce intuizioni preziose su come opera il SARS-CoV-2. Comprendere le interazioni tra N e RNA, così come le interazioni proteina-proteina tra le molecole di N, è cruciale per afferrare l'assemblaggio del virus e il suo ciclo di vita. La natura dinamica e il comportamento di fase dei complessi di N potrebbero influenzare come il virus si replica e come interagisce con il sistema immunitario dell'ospite.
I risultati suggeriscono che queste interazioni potrebbero influenzare lo sviluppo di trattamenti e strategie contro il COVID-19, evidenziando l'importanza della ricerca continua in questo campo. I meccanismi attraverso cui N si assembla e interagisce non solo fanno luce sulla biologia virale di base, ma pongono anche potenziali vie per interventi terapeutici.
Man mano che gli scienziati continuano a indagare sulle proprietà e i comportamenti della proteina N, potremmo scoprire ulteriori strategie per combattere il SARS-CoV-2 e le sue varianti in evoluzione.
Titolo: A narrow ratio of nucleic acid to SARS-CoV-2 N-protein enables phase separation
Estratto: SARS-CoV-2 Nucleocapsid protein (N) is a viral structural protein that packages the 30kb genomic RNA inside virions and forms condensates within infected cells through liquid-liquid phase separation (LLPS). N, in both soluble and condensed forms, has accessory roles in the viral life cycle including genome replication and immunosuppression. The ability to perform these tasks depends on phase separation and its reversibility. The conditions that stabilize and destabilize N condensates and the role of N-N interactions are poorly understood. We have investigated LLPS formation and dissolution in a minimalist system comprised of N protein and an ssDNA oligomer just long enough to support assembly. The short oligo allows us to focus on the role of N-N interaction. We have developed a sensitive FRET assay to interrogate LLPS assembly reactions from the perspective of the oligonucleotide. We find that N alone can form oligomers but that oligonucleotide enables their assembly into a three-dimensional phase. At a [~]1:1 ratio of N to oligonucleotide LLPS formation is maximal. We find that a modest excess of N or of nucleic acid causes the LLPS to break down catastrophically. Under the conditions examined here assembly has a critical concentration of about 1 {micro}M. The responsiveness of N condensates to their environment may have biological consequences. A better understanding of how nucleic acid modulates N-N association will shed light on condensate activity and could inform antiviral strategies targeting LLPS.
Autori: Adam Zlotnick, P. M. Laughlin, K. Young, J. C.-Y. Wang, G. Gonzalez-Gutierrez
Ultimo aggiornamento: 2024-04-11 00:00:00
Lingua: English
URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.04.10.588883
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.04.10.588883.full.pdf
Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
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