Approfondimenti in tempo reale sulle risposte ai farmaci antifungini
Uno studio rivela come i funghi reagiscono ai farmaci antifungini in tempo reale, migliorando le strategie di trattamento.
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Indice
I farmaci antifungini sono importanti per trattare le infezioni causate dai funghi. Per capire quanto siano efficaci questi farmaci, gli scienziati usano un metodo chiamato test di microdiluzione in brodo. Questo metodo aiuta a determinare le concentrazioni minime di farmaci necessarie per fermare la crescita fungina. Per questo, le cellule fungine vengono coltivate in un liquido speciale con diverse quantità di agenti antifungini. Guardando queste colture e misurando la loro torbidità, i ricercatori possono capire la minima quantità di farmaco necessaria per rallentare o fermare la crescita del fungo.
Anche se questo metodo di test è semplice e facile da ripetere nei laboratori, ha le sue limitazioni. Si concentra principalmente su una forma del fungo, che non è la stessa di quella che spesso causa infezioni reali nei pazienti. Questo può portare a perdere risposte importanti dei funghi ai farmaci. Alcuni studi mostrano che forme diverse dello stesso fungo possono rispondere in modo diverso allo stesso farmaco.
La maggior parte della ricerca si è concentrata sull’azione di un tipo specifico di farmaco antifungino chiamato echinocandine, in particolare uno chiamato Caspofungin. Quando il Caspofungin viene usato su certe spore fungine, provoca schemi di crescita irregolari. In alcuni casi, fa sì che parti della struttura fungina si rompano mentre nuova crescita inizia dalle aree danneggiate. Altri tipi di funghi, come Candida Albicans, reagiscono anche al Caspofungin, mostrando cambiamenti nella loro struttura e nel modo in cui crescono.
Queste informazioni rivelano come i funghi rispondono ai farmaci antifungini e sottolineano la necessità di metodi di test più in linea con come si verificano le infezioni nei pazienti. C'è una mancanza di informazioni su come funzionano altri farmaci antifungini, specialmente uno chiamato liposomale Amphotericin B (AmBisome), che è stato usato in clinica per molti anni. L’AmBisome colpisce una parte specifica della cellula fungina, rendendolo efficace contro diverse forme del fungo.
Un nuovo metodo chiamato imaging di cellule vive microfluidico consente agli scienziati di osservare come i funghi si comportano in tempo reale quando sono esposti a farmaci antifungini. Questo metodo è un passo avanti significativo perché permette ai ricercatori di vedere come i funghi reagiscono in modo continuo invece di solo alla fine di un test. Aiuta a mimare meglio come i farmaci funzionerebbero durante un'infezione reale.
In uno studio recente, gli scienziati hanno utilizzato questa tecnica di imaging per confrontare come due patogeni fungini importanti hanno risposto a Caspofungin e AmBisome. Hanno osservato varie reazioni, comprese le diversi modi in cui i funghi crescevano o venivano danneggiati quando esposti ai farmaci.
Osservazione delle Risposte Fungine
Lo studio ha utilizzato ceppi fungini che sono stati modificati per brillare sotto certe luci. Questo ha permesso ai ricercatori di vedere e misurare diversi aspetti delle cellule fungine, come la loro crescita, danno e condizioni generali. I ricercatori hanno stabilito le concentrazioni di farmaco necessarie per inibire la crescita seguendo linee guida consolidate.
Risposta di Aspergillus fumigatus al Caspofungin
Quando A. fumigatus è stato trattato con una bassa dose di Caspofungin, le ife, che sono le lunghe strutture filamentose del fungo, hanno continuato a crescere normalmente all'inizio. Tuttavia, dopo un po’, alcune di queste ife hanno iniziato a rompersi. Si sono verificati diversi tipi di danno, comprese le punte e sezioni più in basso nella struttura. In alcuni casi, il fungo ha mostrato una notevole capacità di ricrescere anche dopo che alcune parti erano state danneggiate.
Curiosamente, è stato osservato un nuovo comportamento dove alcune sezioni delle ife potevano recuperare senza bisogno di far crescere una nuova punta. Questo recupero poteva avvenire relativamente in fretta, e alcune ife mostrano segni di poter ripristinare le funzioni normali dopo il trattamento con Caspofungin.
Tuttavia, non tutte le sezioni del fungo erano in grado di ricrescere. Alcune forme immature del fungo hanno perso tutti i segni di vita dopo essere state esposte al Caspofungin, mentre altre hanno mostrato questa nuova crescita rigenerativa.
Al contrario, quando A. fumigatus è stato trattato con AmBisome, la risposta è stata molto più immediata. Il farmaco ha rapidamente fermato tutta la crescita, e le strutture hanno iniziato a mostrare segni di danno dopo un periodo molto breve. Questa reazione era associata alla formazione di Vacuoli, che sono piccole compartimenti all'interno delle cellule riempiti di liquido. Col tempo, alcuni di questi vacuoli sono scoppiati, portando alla morte cellulare.
Risposta di Candida albicans al Caspofungin
Pattern simili sono stati osservati in C. albicans. Quando esposti al Caspofungin, le ife non hanno smesso di crescere immediatamente. Ci sono volute alcune ore prima che il farmaco iniziasse a avere un effetto. Invece di formare nuove punte come A. fumigatus, C. albicans ha mostrato ramificazioni e ha cambiato metodo di crescita in un altro detto gemmazione isotropica. Questo significa che, invece di crescere più a lungo, le cellule fungine hanno iniziato a crescere in tutte le direzioni.
Il tempo necessario affinché C. albicans iniziasse a subire danni era più lungo rispetto a A. fumigatus. Tuttavia, una volta iniziato il danno, ha continuato a crescere, sebbene in un modo meno strutturato. È stato notato che se il gruppo di cellule era abbastanza densamente popolato prima del trattamento, le cellule centrali avevano una certa protezione contro gli effetti del farmaco.
Dopo essere stato esposto ad AmBisome, C. albicans ha rapidamente smesso di crescere e ha iniziato a mostrare segni di danno interno, simile a A. fumigatus. I vacuoli si sono formati rapidamente e questi infine sono scoppiati, portando a una perdita di funzione.
Confronto delle Dinamiche di Crescita Fungina
I ricercatori hanno utilizzato dati di imaging per seguire come le cellule fungine sono cambiate in risposta ai trattamenti farmacologici nel tempo. Per entrambi i tipi di funghi, è diventato chiaro che le risposte immediate all’AmBisome includevano la fermata della crescita e la perdita di materiali interni. Nel caso di C. albicans, alcune cellule hanno iniziato a mostrare segni di un tipo specifico di danno che non era stato documentato prima nei funghi.
Lo studio ha anche messo in evidenza che, mentre C. albicans ha impiegato più tempo a iniziare a degradarsi sotto trattamento con Caspofungin, è riuscita comunque a crescere in modo diverso rispetto alle cellule non trattate.
Conclusione
Questo studio fa luce su come i funghi si adattano ai farmaci antifungini e sull'importanza di esaminare le loro risposte in tempo reale. Comprendendo i diversi modi in cui i funghi rispondono ai trattamenti, gli scienziati possono sviluppare metodi migliori per combattere queste infezioni in contesti clinici. I risultati hanno implicazioni su come si sviluppa la resistenza antifungina e possono aiutare a guidare i futuri trattamenti per renderli più efficaci contro i patogeni fungini.
Inoltre, la ricerca sottolinea che il modo in cui i funghi crescono e reagiscono durante il trattamento è complesso e può includere comportamenti di recupero sorprendenti. Questa conoscenza è cruciale per migliorare la gestione delle infezioni fungine, specialmente nei pazienti con un sistema immunitario compromesso che sono a maggior rischio di gravi malattie fungine. Utilizzando tecniche di imaging moderne, i ricercatori hanno iniziato a comprendere meglio le dinamiche intricate della crescita e del danno fungino, il che potrebbe aprire la strada a terapie antifungine più efficaci in futuro.
Titolo: Live-cell imaging of pathogenic fungal hyphae reveal dynamic cellular responses to clinical antifungals
Estratto: Antifungal susceptibility testing quantifies end-point fungal biomass in liquid cultures initiated from non-invasive yeast or spore morphologies. However, end-point analyses obscure informative spatio-temporal responses to drug exposures. In the major fungal pathogens Aspergillus fumigatus and Candida albicans we used microfluidic-coupled, fluorescence-mediated live-cell imaging to capture the real-time responses of fungal hyphae to clinical concentrations of AmBisome or Caspofungin. In both fungi, AmBisome exposure caused rapid growth arrest, extensive hyphal vacuolation and membrane blebbing. Responses to Caspofungin exposure were slower with initial lytic effects occurring after 1.5 or 4 hours in A.fumigatus and C.albicans, respectively. Whilst C.albicans hyphae undergo unsalvageable hyphal lysis in response to Caspofungin, A.fumigatus exhibit several compensatory growth behaviours, including a novel resuscitative growth form, that circumvent lytic events to maintain apical and sub-apical hyphal growth. This study reveals how the differing biologies of the two pathogens affected outcomes and contributes to the highly disparate rates of antifungal efficacy amongst commonly used drugs, where spore/yeast-derived inhibitory doses may underestimate the dose required to arrest/kill the invasive hyphal morphotypes of fungal pathogens in vitro.
Autori: Elaine Bignell, D. D. Thomson, R. Inman
Ultimo aggiornamento: 2024-07-22 00:00:00
Lingua: English
URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.19.602466
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.19.602466.full.pdf
Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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