Sviluppi nelle tecniche di microscopia correlativa
Nuovi metodi migliorano l'allineamento nella microscopia correlativa ottica ed elettronica.
Martin L. Jones, D. Krentzel, M. Elphick, M.-C. Domart, C. J. Peddie, R. F. Laine, R. Henriques, L. M. Collinson
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Indice
- Come Funziona la Microscopia a Luce
- Limitazioni della Microscopia a Luce
- Vantaggi della Microscopia Elettronica
- Cosa Offre CLEM
- Passi in CLEM
- Allineamento delle Immagini
- Sfide nell'Allineamento
- Nuovo Flusso di Lavoro per CLEM
- Registrazione delle Nuvole di Punti
- Test della Nuova Metodo
- Accessibilità e Facilità d'Uso
- Prospettive Future
- Conclusione
- Fonte originale
- Link di riferimento
La microscopia correlativa a luce ed elettronica (CLEM) è un metodo usato per osservare da vicino le cellule e le loro parti, unendo due tipi di imaging: la microscopia a luce e la Microscopia Elettronica. Ognuno di questi metodi ha i suoi punti di forza e debolezza. La microscopia a luce è fantastica per osservare cellule vive e vedere il loro comportamento, mentre la microscopia elettronica fornisce immagini molto dettagliate della struttura cellulare. Usando entrambe le tecniche insieme, CLEM permette ai ricercatori di studiare eventi rari in biologia con alta dettaglio e contesto.
Come Funziona la Microscopia a Luce
La microscopia a luce usa la luce per illuminare i campioni, permettendo agli scienziati di vedere strutture a livello cellulare. I ricercatori spesso contrassegnano molecole importanti nelle cellule vive con speciali proteine colorate che brillano quando colpite da una luce specifica. Questo bagliore permette loro di vedere come queste molecole interagiscono mentre le cellule affrontano diverse attività. Tuttavia, a causa del modo in cui si comporta la luce, la microscopia a luce può risolvere solo dettagli che si trovano a circa 200 nanometri di distanza. Significa che, mentre possono vedere grandi strutture, spesso perdono i dettagli più piccoli e fini all'interno delle cellule.
Limitazioni della Microscopia a Luce
Anche se ci sono metodi che possono migliorare la risoluzione della microscopia a luce, spesso richiedono attrezzature speciali e una preparazione attenta dei campioni, il che può limitarne l'uso. Inoltre, la microscopia a luce di solito si concentra su molecole specifiche, fallendo spesso nel mostrare le strutture circostanti all'interno delle cellule. Questo può rendere difficile capire come queste molecole si inseriscano nel contesto più ampio dell'organizzazione cellulare.
Vantaggi della Microscopia Elettronica
La microscopia elettronica supera molte limitazioni della microscopia a luce. Raggiunge una risoluzione molto più alta, permettendo ai ricercatori di vedere dettagli intricati della struttura cellulare. Tuttavia, la microscopia elettronica ha tipicamente un campo visivo più piccolo, il che significa che, mentre mostra molti dettagli in un'area ristretta, potrebbe non catturare un contesto più ampio in modo efficace.
Cosa Offre CLEM
CLEM combina la microscopia a luce e quella elettronica, sfruttando i punti di forza di entrambi i metodi mentre si lavora attorno alle loro debolezze. Questo approccio ha portato a scoperte significative in biologia, come la struttura dei tunnel nei neuroni, la fusione dei vasi sanguigni nei pesci zebra e la localizzazione dei batteri della tubercolosi nelle cellule umane.
Passi in CLEM
Un modo comune per eseguire CLEM prevede due fasi principali: prima si prendono immagini con la microscopia a luce e poi con la microscopia elettronica.
- Preparazione del Campione: Questo implica contrassegnare le strutture di interesse con coloranti fluorescenti o proteine, permettendo ai ricercatori di creare un insieme di immagini attraverso il campione.
- Imaging con Microscopia a Luce: I ricercatori acquisiscono una serie di immagini, fornendo una visione di come le strutture contrassegnate si comportano in tempo reale.
- Preparazione per la Microscopia Elettronica: Il campione viene trattato per preservarne la struttura, colorato con metalli pesanti per creare contrasto e poi incorporato nella resina.
- Imaging con Microscopia Elettronica: Fette sottili del campione vengono tagliate per catturare immagini dettagliate, risultando in una serie di immagini che forniscono una visione ad alta risoluzione delle strutture.
Dopo l'imaging, esistono due serie di immagini: una dalla microscopia a luce e una dalla microscopia elettronica. La sfida ora è allineare queste due serie di immagini in modo che i dati di entrambi i metodi corrispondano, permettendo un'analisi corretta.
Allineamento delle Immagini
Allineare le due serie di immagini può essere complicato a causa delle differenze in risoluzione, contrasto e del modo in cui sono state scattate le immagini. Per fare senso delle due serie di dati, i ricercatori devono trovare un modo per allinearle con precisione. Ci sono due metodi principali per questo:
- Elaborazione delle Immagini: Un modo è regolare una o entrambe le immagini in modo che sembrino simili. Una volta che appaiono simili, si possono applicare metodi tradizionali usati nell'imaging medico per allinearle automaticamente.
- Uso di Punti di Riferimento: Il secondo metodo implica selezionare caratteristiche specifiche che possono essere viste in entrambe le tecniche di imaging. Identificando e contrassegnando queste caratteristiche in entrambi i set di dati, i ricercatori possono calcolare come trasformare un set di immagini per allinearlo con l'altro.
Sfide nell'Allineamento
Entrambi i metodi di allineamento delle immagini hanno le loro sfide. Il primo metodo, che implica l'elaborazione delle immagini per renderle più simili, può essere efficace ma richiede molto lavoro preliminare. Il secondo metodo che utilizza punti di riferimento è manuale e può essere noioso, richiedendo molto tempo, e potrebbe introdurre bias perché le caratteristiche scelte per l'allineamento potrebbero essere simili a quelle in studio. Pertanto, trovare modi per automatizzare l'identificazione dei punti di riferimento è molto desiderabile.
Nuovo Flusso di Lavoro per CLEM
Per affrontare i problemi menzionati, è stato sviluppato un nuovo flusso di lavoro per segmentare i mitocondri, che sono abbondanti e comuni nelle cellule. Questo passaggio aiuta a trovare strutture corrispondenti tra le immagini di microscopia a luce ed elettronica. Possono essere utilizzati diversi metodi per segmentare le immagini, che vanno dall'elaborazione delle immagini tradizionale a tecniche avanzate di apprendimento automatico.
Dopo la Segmentazione dei mitocondri, i punti vengono campionati da quelle segmentazioni per creare una "nuvola di punti" per ogni modalità di imaging. Le Nuvole di Punti rappresentano i dati riducendo la quantità di informazioni da elaborare, migliorando l'efficienza.
Registrazione delle Nuvole di Punti
Una volta create le nuvole di punti, possono essere allineate utilizzando tecniche moderne. Un metodo chiamato Coherent Point Drift (CPD) permette di trattare il compito di allineamento come un problema di probabilità, il che significa che non è necessaria una corrispondenza rigorosa uno a uno tra i punti.
L'intero processo funziona come un plugin per un visualizzatore di immagini chiamato napari. Questo plugin offre un modo semplice per gli utenti di eseguire l'allineamento con la pressione di un pulsante o di apportare modifiche a specifici passaggi del flusso di lavoro se necessario.
Test della Nuova Metodo
Per vedere quanto bene funzioni questo nuovo metodo, sono stati utilizzati set di dati di riferimento di cellule HeLa. Questi set di dati permettono confronti contro allineamenti manuali esperti per valutare le prestazioni del nuovo metodo.
Per le valutazioni, sono state identificate strutture chiave non utilizzate nella registrazione, e la sovrapposizione tra le strutture segmentate delle due modalità è stata misurata. Una metrica chiamata il tasso di veri positivi (TPR) è stata utilizzata per quantificare quanto bene le due immagini si allineano. I risultati hanno mostrato che il metodo automatizzato ha raggiunto un allineamento vicino alle prestazioni di livello esperto.
Accessibilità e Facilità d'Uso
Il plugin di napari rende questo nuovo metodo accessibile a un pubblico più ampio, compresi coloro che potrebbero non essere esperti in microscopia. L'interfaccia consente operazioni rapide, ma offre anche opzioni per visualizzare e modificare le fasi intermedie del processo.
Gli utenti possono facilmente regolare i parametri e vedere come le modifiche influenzano il risultato, o persino usare le loro segmentazioni da fonti diverse, aggiungendo flessibilità al flusso di lavoro.
Prospettive Future
Sebbene il nuovo flusso di lavoro CLEM mostri grandi promesse, ci sono ancora sfide da affrontare. Una è la necessità di migliori metodi automatizzati per la segmentazione degli organelli nella microscopia elettronica. Stanno emergendo metodi e strumenti che facilitano l'addestramento di modelli di apprendimento profondo, permettendo ai ricercatori di migliorare le prestazioni senza bisogno di ampi set di dati da zero.
Un'altra sfida è la dimensione dei set di dati di bioimaging. Man mano che questi set di dati crescono, saranno essenziali metodi per gestire dati più grandi senza incorrere in problemi di memoria del computer.
Ottimizzare il flusso di lavoro per tempi di elaborazione più rapidi, specialmente includendo l'accelerazione GPU, è anche un obiettivo futuro.
Conclusione
CLEM è una tecnica potente che unisce la microscopia a luce e quella elettronica per ottenere una visione completa delle strutture e dei processi biologici. Il nuovo flusso di lavoro CLEM automatizzato, guidato da metodi avanzati di segmentazione e nuvole di punti, apre possibilità per ricerche estensive in molti campi biologici. Rendendo questo metodo accessibile a diversi utenti tramite software user-friendly, ha il potenziale di ampliare la nostra comprensione dei complessi sistemi biologici.
In definitiva, con i continui sviluppi nell'imaging, tecniche di elaborazione e apprendimento automatico, CLEM continuerà a evolversi, fornendo approfondimenti più profondi nel mondo affascinante delle cellule e dei loro componenti.
Fonte originale
Titolo: CLEM-Reg: An automated point cloud based registration algorithm for correlative light and volume electron microscopy
Estratto: Correlative light and volume electron microscopy (vCLEM) is a powerful imaging technique that enables the visualisation of fluorescently labelled proteins within their ultrastructural context on a subcellular level. Currently, expert microscopists align vCLEM acquisitions using time-consuming and subjective manual methods. This paper presents CLEM-Reg, an algorithm that automates the 3D alignment of vCLEM datasets by leveraging probabilistic point cloud registration techniques. These point clouds are derived from segmentations of common structures in each modality, created by state-of-the-art open-source methods, with the option to leverage alternative tools from other plugins or platforms. CLEM-Reg drastically reduces the time required to register vCLEM datasets to a few minutes and achieves correlation of fluorescent signal to sub-micron target structures in EM on three newly acquired vCLEM benchmark datasets (fluorescence microscopy combined with FIB-SEM or SBF-SEM). CLEM-Reg was then used to automatically obtain vCLEM overlays to unambiguously identify TGN46-positive transport carriers involved in the trafficking of proteins between the trans-Golgi network and plasma membrane. The datasets are available in the EMPIAR and BioStudies public image archives for reuse in testing and developing multimodal registration algorithms by the wider community. A napari plugin integrating the algorithm is also provided to aid end-user adoption.
Autori: Martin L. Jones, D. Krentzel, M. Elphick, M.-C. Domart, C. J. Peddie, R. F. Laine, R. Henriques, L. M. Collinson
Ultimo aggiornamento: 2024-12-26 00:00:00
Lingua: English
URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.05.11.540445
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.05.11.540445.full.pdf
Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
Modifiche: Questa sintesi è stata creata con l'assistenza di AI e potrebbe presentare delle imprecisioni. Per informazioni accurate, consultare i documenti originali collegati qui.
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