Avancées en Spatial Omics : La technique MOLseq
MOLseq révèle les interactions cellulaires avec une précision de ouf grâce à un contrôle lumineux innovant.
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Table des matières
- Types de Méthodes d'Omics Spatial
- Avancées Récentes en Omics Spatial
- L'Importance de la Résolution Spatiale
- Applications de MOLseq
- Limitations de MOLseq
- Préparation des Échantillons pour MOLseq
- Ligation Contrôlée par Lumière pour le Codage
- Haute Spécificité Spatiale et Précision
- Conclusion
- Source originale
- Liens de référence
L'omics spatial est une méthode qui aide les scientifiques à étudier comment les cellules se comportent dans leur environnement naturel. Elle fournit des infos détaillées sur les différents types de cellules, leurs fonctions et comment elles interagissent dans les tissus. Avec cette approche, les chercheurs peuvent mieux comprendre la biologie de divers organes et comment les maladies se développent. Les avancées récentes dans l'omics spatial ont permis de mesurer différents éléments dans les cellules, comme les gènes, les protéines et les changements liés aux maladies.
Types de Méthodes d'Omics Spatial
Les méthodes d'omics spatial peuvent être divisées en deux grandes catégories : les approches basées sur l'imagerie et les approches basées sur le séquençage.
Approches Basées sur l'Imagerie
Les méthodes basées sur l'imagerie permettent aux chercheurs de détecter et de mesurer plein de molécules différentes, comme l’ARN et les protéines, en une seule étape. Ce type de méthode peut montrer où se trouvent ces molécules dans des cellules individuelles. Par contre, un inconvénient, c’est que les chercheurs doivent généralement choisir à l'avance quels gènes ou molécules étudier.
Approches Basées sur le Séquençage
Les méthodes basées sur le séquençage ne nécessitent pas de sélection préalable de molécules spécifiques et peuvent fournir une vue plus large des infos génétiques présentes dans un échantillon. Par contre, ces méthodes ont généralement une résolution spatiale plus faible que les méthodes basées sur l'imagerie, parce qu'elles fonctionnent en étiquetant les molécules avec des marqueurs ADN spécifiques. Ces étiquettes aident à identifier l'origine des molécules mais ne donnent qu'une vue en deux dimensions.
Avancées Récentes en Omics Spatial
Une nouvelle technique appelée MOLseq a été développée pour surmonter certaines limitations des méthodes précédentes. MOLseq utilise de la Lumière pour contrôler comment les molécules sont étiquetées, permettant des mesures précises en trois dimensions, jusqu'au niveau des cellules individuelles. Cette méthode implique de lier de courtes séquences d'ADN aux molécules cibles à des endroits spécifiques dans un échantillon.
Comment Fonctionne MOLseq
Dans le processus de MOLseq, les chercheurs commencent par attacher un amorce ADN spécial aux molécules qu'ils veulent étudier. Cette amorce peut se connecter avec l’ARN messager (mRNA) ou les protéines dans les cellules. Après avoir attaché l’amorce, les chercheurs utilisent une technique appelée transcription inverse pour convertir le mRNA en ADN complémentaire (CDNA). Cette étape aide à étiqueter les molécules pour une analyse ultérieure.
Ensuite, les chercheurs utilisent de la lumière pour contrôler l’ajout de séquences ADN uniques, appelées Codes-barres, au cDNA à différents emplacements. Cela se fait à travers une série d'étapes où des motifs lumineux aident à définir quelles zones de l’échantillon seront étiquetées avec des codes-barres spécifiques. En planifiant soigneusement ces étapes, les chercheurs peuvent créer une variété de codes-barres qui capturent des infos détaillées sur les molécules dans leurs emplacements d'origine en trois dimensions.
L'Importance de la Résolution Spatiale
Un des grands avantages de MOLseq est sa haute résolution spatiale. Les chercheurs peuvent contrôler précisément où les codes-barres sont ajoutés dans un échantillon, leur permettant de cartographier comment différents types de cellules interagissent dans leur environnement naturel. Ce niveau de résolution est essentiel pour comprendre des processus biologiques complexes, comme comment différents types de cellules travaillent ensemble dans les organes ou comment les maladies se propagent.
Applications de MOLseq
MOLseq a plein d’applications potentielles en recherche biologique. En fournissant une vue détaillée des interactions cellulaires, elle permet aux scientifiques d'identifier des changements spécifiques dans l'expression des gènes liés aux maladies. Cette capacité à pinpoint les changements peut mener à des avancées significatives dans la compréhension de diverses conditions de santé et à développer des thérapies ciblées.
Études de Cas Utilisant MOLseq
Des chercheurs ont réussi à utiliser MOLseq pour étudier divers types de cellules et conditions. Par exemple, des études ont montré comment différents types de cellules dans les tissus changent lors de la progression de la maladie. En capturant les signatures moléculaires uniques de ces cellules, les scientifiques peuvent obtenir des infos sur comment les maladies se développent et potentiellement identifier de nouvelles cibles de traitement.
Limitations de MOLseq
Bien que MOLseq ait beaucoup d'avantages, il y a aussi des défis à relever. La méthode repose sur un contrôle précis de la lumière, ce qui peut parfois entraîner un étiquetage non voulu des molécules dans des zones en dehors de la cible prévue. Ce problème peut être plus prononcé lorsqu'on travaille avec de petites régions spatiales, rendant plus difficile d'assurer l'exactitude.
En plus, il y a une limite au nombre de molécules qui peuvent être étiquetées avec cette méthode. Alors que les chercheurs essaient d’augmenter la diversité des codes-barres générés, ils doivent trouver un équilibre entre le nombre de tours d'étiquetage et l'efficacité du processus. De futures améliorations dans ces domaines sont cruciales pour le développement continu des techniques d'omics spatial.
Préparation des Échantillons pour MOLseq
Pour réaliser des expériences avec MOLseq, les chercheurs doivent préparer leurs échantillons avec soin. En général, ils commencent avec des cellules cultivées qui sont fixées en place. Cela implique de traiter les cellules avec des solutions spécifiques pour garder leurs structures intactes pour l'étude. Après avoir fixé les cellules, les chercheurs hybridisent les amorces ADN aux molécules cibles d'ARN ou de protéines, ce qui permet l’étiquetage lors des étapes suivantes.
Une fois que les amorces sont liées, les chercheurs effectuent une transcription inverse pour créer du cDNA, qui sert de base pour d'autres étiquetages. Les échantillons sont ensuite traités avec un mélange de ligation qui facilite l’ajout de tags selon la conception expérimentale.
Ligation Contrôlée par Lumière pour le Codage
L'aspect innovant de MOLseq réside dans son utilisation de la lumière pour contrôler l’ajout de codes-barres. À travers un processus appelé ligation, les chercheurs peuvent lier des séquences d'ADN au cDNA dans des zones spécifiques en dirigeant la lumière vers ces régions. Ce processus permet aux chercheurs de créer des codes-barres complexes composés de plusieurs lettres représentant les caractéristiques uniques de l’échantillon.
L’approche contrôlée par la lumière permet aux scientifiques d’effectuer plusieurs tours de ligation, créant un ensemble diversifié de codes-barres pouvant être utilisés pour identifier différentes molécules dans divers emplacements spatiaux. Au fur et à mesure que le nombre de tours augmente, le potentiel pour des codes-barres uniques croît significativement, fournissant une méthode évolutive et efficace pour une analyse résolue spatialement.
Haute Spécificité Spatiale et Précision
MOLseq est conçu pour atteindre une haute spécificité spatiale. Alors que les chercheurs utilisent des motifs lumineux ciblés, ils peuvent limiter l'ajout de codes-barres à des zones d'intérêt prédéterminées. Cette précision conduit à des résultats plus exacts et permet une cartographie efficace des interactions cellulaires dans les tissus.
Dans les applications pratiques, des études ont montré qu'avec une optimisation et un contrôle adéquats, le processus de codage peut atteindre des niveaux élevés d'efficacité, avec des estimations suggérant jusqu'à 90% de précision dans certains cas. Les chercheurs peuvent identifier et quantifier divers transcrits dans un échantillon, découvrant des infos précieuses sur les fonctions et les interactions cellulaires.
Conclusion
MOLseq représente une avancée significative dans le domaine de l'omics spatial, fournissant aux chercheurs un outil puissant pour explorer le paysage moléculaire des tissus à une résolution sans précédent. En combinant le contrôle optique avec le séquençage ADN, cette approche ouvre de nouvelles possibilités pour comprendre la biologie au niveau cellulaire.
Alors que la technologie continue à se développer, MOLseq a le potentiel de transformer notre compréhension de divers processus biologiques et des mécanismes de maladies. En explorant les interactions entre différents types de cellules et leurs environnements, les scientifiques peuvent débloquer de nouvelles perspectives qui pourraient mener à de meilleurs traitements et à des remèdes pour diverses conditions de santé.
Les recherches futures se concentreront sur l'affinement des techniques utilisées dans MOLseq, sur la prise en compte de ses limitations et sur l'expansion de ses applications. Avec des avancées continues, cette approche prometteuse est prête à devenir un acteur clé dans le domaine en pleine évolution de la génomique et de la transcriptomique spatiales.
Titre: Multiplexed optical barcoding and sequencing for spatial omics
Résumé: Spatial omics has brought a fundamental change in the way that we study cell and tissue biology in health and disease. Among various spatial omics methods, genome-scale imaging allows transcriptomic, 3D-genomic, and epigenomic profiling of individual cells with high spatial (subcellular) resolution but often requires a preselection of targeted genes or genomic loci. On the other hand, spatially dependent barcoding of molecules followed by sequencing provides untargeted, genome-wide profiling but typically lacks single-cell resolution. Here, we report a spatial omics method that could potentially combine the power of the two approaches by optically controlled spatial barcoding followed by sequencing. Specifically, we utilize patterned light to encode the locations of cells in tissues using oligonucleotide-based barcodes and then identify the barcoded molecular content, such as mRNAs, by sequencing. This optical barcoding method is designed with multiplexing and error-correction capacity and achieved by a light-directed ligation chemistry that attaches distinct nucleic-acid sequences to the reverse transcribed cDNA products at different locations. As a proof of principle for this method, we demonstrated high-efficiency in situ light-directed ligation, spatially dependent barcoding with multiplexed light-controlled ligations, and high-accuracy detection of spatially barcoded mRNAs in cells.
Auteurs: Xiaowei Zhuang, A. V. Venkatramani, D. Ciftci, L. Cohen, C. Li, K. Pham
Dernière mise à jour: 2024-06-05 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.04.597495
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.04.597495.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.
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