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Enquête sur comment la transcription affecte les modifications des histones

Des recherches montrent les liens compliqués entre la transcription et les changements d'histones.

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Les gènes dans notre ADN s'activent ou s'éteignent grâce à un processus appelé Transcription. Ce processus fait intervenir un complexe appelé ARN polymérase II (RNAP2) qui se déplace le long de notre ADN et aide à produire de l'ARN, qui du coup fabrique des protéines. L'ADN est enroulé autour de protéines appelées Histones, formant des structures connues sous le nom de chromatine. Parfois, cette chromatine est bien tassée, ce qui rend difficile l'accès de RNAP2 aux gènes. D'autres fois, elle est plus lâche, permettant un accès plus facile. Différentes protéines aident à modifier la structure de cette chromatine pour promouvoir ou bloquer la transcription.

Changements dans la chromatine pendant la transcription

Il y a certaines marques sur les histones qui peuvent indiquer si un gène est actif ou inactif. Par exemple, quand un gène est en cours d'utilisation, il a souvent des modifications spécifiques, comme l'ajout de groupes chimiques tels que les groupes acétyles, qui aident à garder la chromatine ouverte. Cependant, les scientifiques essaient encore de comprendre la relation exacte entre ces modifications et l'acte de transcription lui-même.

Certaines études suggèrent que ces modifications dépendent de la transcription. D'autres recherches montrent que ces marques peuvent rester même quand la transcription est bloquée. Ça crée une situation confuse pour les scientifiques qui essaient de comprendre comment la transcription et les modifications des histones se rapportent l'une à l'autre.

Le rôle des stimuli dans la transcription

Les chercheurs utilisent souvent des signaux externes, comme des hormones, pour étudier les changements dans la transcription. Une hormone en particulier, le dexaméthasone, peut stimuler des changements rapides dans la liaison de RNAP2 et les modifications des histones dans les cellules cancéreuses. Pour comprendre la séquence des événements après ce traitement hormonal, certains scientifiques ont décidé de bloquer la transcription avec un composé appelé triptolide. Le triptolide empêche RNAP2 de commencer le processus de transcription.

En traitant les cellules avec du triptolide, les chercheurs ont découvert qu'ils pouvaient empêcher RNAP2 de se lier à des gènes spécifiques, même quand il était stimulé par l'hormone dexaméthasone. Ce traitement leur a permis d'explorer comment bloquer la transcription affecterait les modifications des histones.

Résultats sur l'acétylation des histones

Quand les chercheurs ont examiné les niveaux d'acétylation sur les histones après avoir utilisé du triptolide, ils ont été surpris par les résultats. Bien que le triptolide ait bloqué RNAP2 de se lier à ces gènes, ils ont quand même observé une augmentation de l'acétylation des histones sur certains gènes actifs. Cela indiquait que l'acétylation pouvait se produire indépendamment de la transcription.

Par exemple, sur un gène appelé ZBTB16, les chercheurs ont trouvé des augmentations d'acétylation à des régions spécifiques, même si RNAP2 n'était pas présent. De même, pour le gène GLUL, le traitement au triptolide a également conduit à des niveaux d'acétylation plus élevés, peu importe si RNAP2 était occupé à fabriquer de l'ARN.

Exploration d'autres modifications des histones

Cela a amené les chercheurs à se demander si l'augmentation de l'acétylation était unique à un type de modification particulier ou si cela s'étendait à d'autres histones aussi. Ils ont découvert que l'inhibition de la transcription entraînait plus d'acétylation sur plusieurs histones. Cependant, d'autres marques, comme la tri-méthylation d'une histone spécifique appelée H3K4, sont restées inchangées. Cela a montré que bien que certaines Acétylations pouvaient augmenter sans transcription, d'autres marques ne changeaient pas.

D'autres études ont également révélé que la variante d'histone H2AZ augmentait sur des gènes actifs après le blocage de la transcription. Malgré ces changements, la structure globale de l'ADN ne semblait pas être significativement affectée par le traitement au triptolide.

Confirmation des résultats à travers les types cellulaires

Les chercheurs voulaient confirmer si ces résultats étaient uniques à un type de cellule cancéreuse ou s'ils pouvaient s'appliquer à d'autres types de cellules. Ils ont examiné plusieurs lignées cellulaires cancéreuses différentes et des cellules normales et ont obtenu des résultats cohérents : bloquer la transcription a conduit à une augmentation de l'acétylation et de l'incorporation d'H2AZ. Cependant, d'autres modifications sont restées principalement inchangées. Cette cohérence à travers les types cellulaires indique que les effets du blocage de la transcription pourraient être un phénomène général.

Enquête sur les techniques d'inhibition de la transcription

Pour confirmer que les changements dans l'acétylation étaient directement dus au blocage de l'initiation de la transcription et non simplement à une réduction des niveaux de RNAP2, les chercheurs ont utilisé différentes stratégies pour inhiber la transcription. Une méthode a utilisé un produit chimique appelé flavopiridol, qui ne bloque pas l'initiation de la transcription mais stoppe l'élongation. Ce traitement a entraîné seulement une légère augmentation de l'acétylation par rapport aux effets plus prononcés observés avec le triptolide, suggérant que c'est effectivement l'initiation de la transcription qui gouverne ces changements.

Le rôle de la dégradation de RNAP2

Ensuite, les chercheurs ont examiné si dégrader RNAP2 produirait des résultats similaires. Un système spécial a été utilisé pour dégrader RNAP2 dans les cellules. Lorsque RNAP2 a été dégradé, ils ont trouvé une augmentation de l'acétylation des histones et de H2AZ, similaire à lorsqu'on bloquait la transcription. Cela indiquait que bloquer l'initiation de la transcription et dégrader RNAP2 entraînaient toutes deux une augmentation de l'acétylation, mais les effets étaient légèrement moins prononcés avec juste la dégradation de RNAP2.

L'influence des modificateurs d'histones

L'acétylation des histones est contrôlée par deux types principaux d'enzymes : les acétyltransférases, qui ajoutent des groupes acétyles, et les Désacétylases, qui les retirent. Les chercheurs ont ensuite enquêté pour savoir si l'augmentation de l'acétylation après le blocage de la transcription était due à une activité accrue des acétyltransférases ou à une baisse d'activité des désacétylases. Ils ont utilisé des médicaments pour bloquer l'activité de ces enzymes.

Ils ont constaté que l'inhibition des acétyltransférases réduisait les niveaux globaux d'acétylation mais ne stoppait pas l'augmentation observée après le traitement par triptolide. En revanche, l'inhibition des désacétylases entraînait une augmentation significative des niveaux d'acétylation. Lorsque la transcription était bloquée en même temps que l'inhibition des désacétylases, il n'y avait pas d'augmentation supplémentaire de l'acétylation.

Cela a suggéré que l'augmentation de l'acétylation due au blocage de l'initiation de la transcription venait probablement d'une perte d'activité des désacétylases plutôt que d'un gain d'activité des acétyltransférases.

Comprendre la relation entre la transcription et les modifications des histones

Les résultats de ces études indiquent une relation complexe entre la transcription et les modifications des histones. Alors que le blocage de l'initiation de la transcription entraîne une augmentation de l'acétylation spécifique des histones et de l'incorporation de H2AZ, ces événements ne nécessitent pas une transcription active. Il semble que lorsque la transcription est bloquée, il y ait des changements dans les activités des enzymes qui modifient les histones.

De plus, une meilleure compréhension de ces processus peut fournir des aperçus sur la façon dont les gènes s'activent et s'éteignent dans différentes conditions. En saisissant les connexions entre la transcription et les modifications des histones, les chercheurs peuvent commencer à tracer de nouvelles pistes dans les études de régulation des gènes et des traitements potentiels pour des maladies comme le cancer.

Directions futures

Les futures recherches vont probablement se concentrer sur les mécanismes sous-jacents qui expliquent comment le blocage de la transcription affecte les modifications des histones. Comprendre comment ces changements influencent l'expression génique et si différentes régions géniques réagissent différemment à des stimuli similaires sera vital. Cela pourrait éclairer des stratégies plus efficaces pour manipuler l'expression génique dans diverses maladies.

Une enquête plus approfondie sur les rôles distincts de l'initiation et de l'élongation de la transcription, et leurs impacts précis sur différentes marques d'histones, est aussi nécessaire. Cette interaction complexe reste un domaine riche d'études, promettant d'approfondir notre compréhension de la génétique et de ses applications en médecine.

Source originale

Titre: RNA Polymerase II coordinates histone deacetylation at active promoters

Résumé: Nucleosomes at actively transcribed promoters have specific histone post-transcriptional modifications and histone variants. These features are thought to contribute to the formation and maintenance of a permissive chromatin environment. Recent reports have drawn conflicting conclusions about whether these histone modifications depend on transcription. We used triptolide to inhibit transcription initiation and degrade RNA Polymerase II and interrogated the effect on histone modifications. Transcription initiation was dispensable for de novo and steady-state histone acetylation at transcription start sites (TSSs) and enhancers. However, at steady state, blocking transcription initiation increased the levels of histone acetylation and H2AZ incorporation at active TSSs. These results demonstrate that deposition of specific histone modifications at TSSs is not dependent on transcription and that transcription limits the maintenance of these marks.

Auteurs: Jackson A Hoffman, K. W. Trotter, T. K. Archer

Dernière mise à jour: 2024-09-17 00:00:00

Langue: English

Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.09.17.613553

Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.09.17.613553.full.pdf

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