Amélioration de la différenciation des cellules cardiaques à partir des cellules H9c2
La recherche améliore les méthodes pour différencier les cellules musculaires cardiaques des cellules H9c2.
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Table des matières
- Méthodologie de l'étude
- Préparation du Verre
- Préparation des Hydrogels
- Test Mécanique
- Fonctionnalisation de Surface
- Culture Cellulaire
- Isolation des Cardiomyocytes
- Marquage Fluorescent
- Acquisition d'Image
- Observation des Transitoires de calcium
- Analyse de Quantification de l'Actine
- Analyse des Transitoires de Calcium
- Imagerie par Transformation de Fourier
- Résultats Clés
- Condition Optimale de Différenciation
- Confirmation du Phénotype Cardiaque
- Influence du Sérum Bovin Fœtal
- Dynamique du Calcium et Fonction Cellulaire
- Conditions de MEC et Différenciation
- Comparaison avec les Cellules Cardiaques Primaires
- Conclusion
- Source originale
Les maladies cardiovasculaires sont depuis des années la principale cause de décès dans le monde. Cette situation souligne l'urgence de trouver de meilleurs traitements et de faire des recherches sur la régénération des cellules cardiaques. Les problèmes cardiaques courants incluent l'épaississement du muscle cardiaque, les battements irréguliers et les maladies musculaires cardiaques. Les scientifiques étudient souvent les cellules cardiaques, notamment les Cardiomyocytes, pour en apprendre davantage sur ces enjeux fondamentaux.
Pour examiner les affections cardiaques, les chercheurs utilisent souvent des types de cellules spéciaux. Un type est appelé cellules cardiaques primaires, y compris les cardiomyocytes, qui sont les cellules principales du muscle cardiaque. En plus d'utiliser des cellules primaires, les chercheurs étudient aussi les cellules souches, qui peuvent se transformer en différents types de cellules, y compris les cellules cardiaques. Ces cellules souches proviennent d'embryons ou peuvent être fabriquées à partir d'autres types de cellules. Bien que les cellules primaires et les cellules souches montrent des caractéristiques similaires aux cellules cardiaques, elles présentent certains inconvénients, comme des préoccupations éthiques, la possibilité de former des tumeurs, et les coûts associés à leur utilisation. Par conséquent, les scientifiques utilisent aussi des lignées cellulaires immortalisées, qui sont des cellules qui peuvent se diviser indéfiniment. Des exemples de ces lignées cellulaires incluent HL-1, AC16 et H9c2.
Les cellules H9c2 ont été extraites du tissu cardiaque de jeunes rats. Elles sont intéressantes parce qu'elles peuvent se transformer en cellules musculaires cardiaques et squelettiques. Quand les chercheurs ajoutent une substance appelée acide rétinoïque à ces cellules d'une manière spécifique, cela peut les aider à se transformer en cellules musculaires cardiaques. Jusqu'à présent, les scientifiques ont utilisé les cellules H9c2 pour étudier les effets de substances toxiques sur les cellules cardiaques, l'épaississement du cœur, le stress oxydatif, et le fonctionnement des canaux calciques dans les cellules cardiaques. Même si ces cellules montrent certains signes d'être des cellules cardiaques, elles ne développent pas les mêmes structures que les cellules cardiaques normales et ne peuvent pas se contracter comme un muscle cardiaque sain.
Étant donné que la différenciation en cellules cardiaques peut être compliquée, les chercheurs ont cherché de meilleures méthodes pour ce processus. Une approche consiste à étudier la Matrice Extracellulaire (MEC), qui fournit un environnement de soutien pour les cellules. Les recherches ont montré que les propriétés de la MEC, comme sa rigidité et ses caractéristiques de surface, peuvent grandement influencer le comportement des cellules. Les cellules peuvent réagir à la composition et à la texture de la MEC, ce qui aide à guider leur développement.
Par exemple, lorsque les cellules sont placées sur des surfaces qui imitent la rigidité des tissus réels, elles montrent une augmentation de la différenciation en type cellulaire désiré. Lorsque les scientifiques ont examiné comment différentes conditions affectent la formation des cellules cardiaques, ils ont observé que la MEC joue un rôle crucial dans le processus. Les chercheurs ont découvert que les cellules peuvent détecter des motifs et des textures dans la MEC et s'aligner en conséquence, influençant leur développement.
Dans cette étude, les scientifiques visaient à améliorer le processus de différenciation des cellules H9c2 en cellules cardiaques. Ils ont d'abord examiné comment ces cellules poussent sur des surfaces en verre dans des conditions de culture spécifiques. Grâce à des techniques d'imagerie avancées, ils ont découvert qu'utiliser un milieu de croissance régulier avec 10 % de sérum bovin fœtal (SBF) produisait le plus grand nombre de cellules cardiaques se différenciant sur deux semaines. Pendant ce temps, différentes concentrations d'acide rétinoïque n'ont pas abouti à des résultats similaires. Les chercheurs ont vérifié que les cellules différenciées montraient des marqueurs typiques des cellules cardiaques, et ils ont aussi observé des structures semblables à des muscles et des réponses à la stimulation électrique.
Après avoir identifié les meilleures conditions pour la croissance cellulaire sur verre, les chercheurs ont examiné comment des hydrogels de polyacrylamide, qui imitent mieux la MEC, affecteraient la différenciation des cellules H9c2. Ils ont constaté qu'une certaine quantité de Fibronectine, une protéine qui aide les cellules à se fixer aux surfaces, améliorait la croissance des cellules. Cependant, en comparant l'efficacité de la différenciation cellulaire entre les surfaces en verre et les hydrogels, ils ont trouvé que moins de cellules se sont différenciées sur l'hydrogel optimisé, suggérant qu même si la MEC est essentielle, cela n'a pas conduit à de meilleurs résultats.
En plus, l'étude a aussi examiné comment les cellules H9c2 se comportent dans différents environnements. Les chercheurs ont préparé des surfaces en verre et des hydrogels pour fournir une variété de propriétés de MEC afin d'étudier à quel point les cellules H9c2 pouvaient se différencier en cellules cardiaques. Le but était de trouver les meilleures conditions pour maximiser l'efficacité de la différenciation.
Méthodologie de l'étude
Préparation du Verre
Les chercheurs ont utilisé des lames de verre rondes et carrées qu'ils ont nettoyées selon une méthode détaillée. Ce processus de nettoyage impliquait de laver le verre avec divers solvants suivi d'un revêtement avec une solution spéciale pour le rendre adapté à des expériences ultérieures.
Préparation des Hydrogels
Pour préparer les hydrogels, une solution chimique spécifique a été faite et laissée à solidifier entre des lames de verre. Cela a donné des hydrogels qui pouvaient imiter les propriétés de la MEC importantes pour la croissance cellulaire. Les hydrogels ont ensuite été trempés dans l'eau pour éliminer tout produit chimique résiduel, garantissant qu'ils étaient sûrs pour les cellules.
Test Mécanique
La rigidité des hydrogels a été mesurée à l'aide d'un outil spécialisé. Ce test a aidé à confirmer que les matériaux avaient les propriétés mécaniques souhaitées pour soutenir la croissance cellulaire.
Fonctionnalisation de Surface
Les chercheurs ont traité les hydrogels avec un produit chimique spécial pour les rendre encore meilleurs pour l'adhésion cellulaire. Après ce processus de revêtement, ils ont ajouté des concentrations variables de fibronectine aux surfaces pour créer différentes conditions d'attachement cellulaire.
Culture Cellulaire
Les cellules H9c2 ont été cultivées dans un environnement contrôlé. Les chercheurs ont entretenu les cellules et les ont préparées pour les expériences en les plaçant sur des surfaces recouvertes de fibronectine. Ils ont testé différentes conditions pour déterminer à quel point les cellules pouvaient se différencier en cellules cardiaques.
Isolation des Cardiomyocytes
Un autre groupe de cellules cardiaques a été isolé de jeunes rats en utilisant une méthode spécifique, fournissant une comparaison pour les études des cellules H9c2 et aidant à valider les résultats liés à la différenciation.
Marquage Fluorescent
Pour visualiser les cellules, les chercheurs les ont teintées avec des marqueurs fluorescents. Cela leur a permis de voir comment les cellules différaient dans leur structure et si elles exprimaient des protéines clés associées aux cellules musculaires cardiaques.
Acquisition d'Image
Les chercheurs ont utilisé des systèmes d'imagerie avancés pour capturer des détails des cellules teintées, permettant d'analyser les structures et le comportement des cellules après différenciation.
Transitoires de calcium
Observation desLes scientifiques ont examiné les niveaux de calcium dans les cellules H9c2 différenciées à l'aide d'un colorant fluorescent. Cette analyse était essentielle pour évaluer à quel point les cellules fonctionnaient comme de vraies cellules cardiaques en réponse à une stimulation électrique.
Analyse de Quantification de l'Actine
Pour analyser les filaments d'actine dans les cellules, un logiciel spécifique a été utilisé pour quantifier leurs niveaux. L'actine est vitale pour la fonction musculaire, donc examiner sa présence était crucial pour déterminer le succès de la différenciation cellulaire.
Analyse des Transitoires de Calcium
Les chercheurs ont traité les données sur les signaux de calcium des cellules pour évaluer à quel point les cellules coordonnaient leurs niveaux de calcium. C'est important pour comprendre la fonction des cellules cardiaques.
Imagerie par Transformation de Fourier
Une technique appelée imagerie par transformation de Fourier a aidé à visualiser les signaux de calcium, fournissant des informations supplémentaires sur le fonctionnement des cellules H9c2 en réponse à la stimulation.
Résultats Clés
Condition Optimale de Différenciation
L'étude visait à trouver les meilleures conditions pour différencier les cellules H9c2. Diverses combinaisons de milieux, y compris différentes concentrations de SBF et d'acide rétinoïque, ont été testées. Ils ont trouvé que maintenir les cellules en 10 % de SBF pendant une semaine menait à la différenciation la plus efficace. D'autres conditions ont abouti à des taux de différenciation plus bas.
Confirmation du Phénotype Cardiaque
Les chercheurs ont confirmé que les cellules se sont différenciées en cellules musculaires cardiaques en vérifiant des marqueurs spécifiques. Ils ont aussi détecté des signes de structures musculaires dans les cellules cultivées dans des conditions optimales.
Influence du Sérum Bovin Fœtal
Maintenir une concentration plus élevée de SBF a été trouvé soutenir de meilleurs taux de différenciation par rapport à une réduction des niveaux de sérum ou à l'utilisation d'acide rétinoïque. Les résultats ont suggéré que le SBF contient des composants essentiels qui aident à soutenir le développement des cellules cardiaques.
Dynamique du Calcium et Fonction Cellulaire
Les cellules H9c2 ont montré des transitoires de calcium similaires à ceux observés dans les cellules cardiaques primaires, indiquant qu'elles fonctionnaient comme de vraies cellules cardiaques. C'était une découverte importante, car cela démontrait le potentiel des cellules H9c2 différenciées à se comporter comme des cellules musculaires cardiaques fonctionnelles.
Conditions de MEC et Différenciation
Malgré les avantages apparents des hydrogels, l'étude a trouvé que les cellules H9c2 ne se différenciaient pas efficacement sur ces substrats par rapport au verre. Les résultats indiquaient que bien que la MEC soit essentielle, la dynamique de la croissance cellulaire et de la différenciation peut poser des problèmes lors de l'utilisation d'hydrogels.
Comparaison avec les Cellules Cardiaques Primaires
Les cellules H9c2 différenciées montraient certaines similitudes avec les cellules cardiaques primaires en termes de structure et de fonction. Cependant, les chercheurs ont noté qu'il fallait encore des modifications supplémentaires de l'environnement pour améliorer l'attachement et la différenciation.
Conclusion
L'étude a fourni des aperçus précieux sur comment améliorer l'efficacité de la différenciation des cellules H9c2 en cellules cardiaques. Les résultats ont révélé que maintenir des niveaux plus élevés de sérum pendant la différenciation, plutôt que d'utiliser de l'acide rétinoïque, était plus efficace. De plus, bien que les hydrogels étaient censés créer un meilleur environnement pour la croissance cellulaire, ils n'ont pas conduit à une meilleure différenciation dans ce cas.
Dans l'ensemble, la recherche souligne la complexité de la différenciation des cellules cardiaques et met en lumière l'importance d'une attention minutieuse aux conditions de culture et aux matériaux. D'autres études seront nécessaires pour affiner ces processus et explorer le potentiel des cellules H9c2 pour la recherche cardiaque et la médecine régénérative.
Alors que les chercheurs continuent d'explorer les meilleures pratiques pour la différenciation des cellules cardiaques, établir de meilleures méthodes sera crucial pour faire avancer les traitements des maladies cardiovasculaires. Comprendre comment les cellules interagissent avec leur environnement et optimiser ces facteurs sera essentiel pour améliorer l'efficacité des futures thérapies cardiaques.
Titre: Optimization of H9c2 differentiation leads to calcium-active and striated cardiac cells without addition of retinoic acid.
Résumé: As a reliable alternative to animal testing in cardiovascular research, it is crucial to improve differentiation of immortalized cell lines. In this study, we focused on optimizing the differentiation efficiency of the H9c2 cell line into cardiomyocytes using a high-throughput, automated image processing approach. While previous studies used protocols involving retinoic acid to enhance cardiac differentiation, we applied a simplified medium composition that results in higher differentiation rates. Along that line, we differentiated H9c2 cells into cardiomyocytes, which not only showed sarcomere-characteristic striation but also periodic intracellular calcium signaling for the first time. As a second step, we examined the potential application of polyacrylamide hydrogels (E = 12 kPa) with defined fibronectin coating densities. The optimum fibronectin density of 2.6 {micro}g/cm2 found for single cells was investigated to further improve the differentiation efficiency. However, the differentiation and proliferation dynamics dominate the adhesion forces between the cells and the hydrogel, and thus, result in premature clustering and detachment. In conclusion, we identified an optimized differentiation protocol and provided a basis for the further investigation necessary to potentially use hydrogels as natural cell environment, aiming to raise the differentiation efficiency even more.
Auteurs: Marcel Hoerning, J. Brock
Dernière mise à jour: 2024-09-24 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.09.24.614681
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.09.24.614681.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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