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# Biología# Bioquímica

Importación de proteínas en mitocondrias: Mecanismos clave

Este estudio revela cómo TOMM20 y TOMM70 clasifican proteínas para funciones mitocondriales.

Ralf-Peter Jansen, S. Akram, K. I. Zittlau, B. Macek

― 9 minilectura


Mecanismos deMecanismos declasificación deproteínas mitocondrialesmitocondriales.en la importación de proteínasExaminando los roles de TOMM20 y TOMM70
Tabla de contenidos

En las células eucariotas, las proteínas necesitan ser clasificadas y enviadas a sus lugares correctos dentro de la célula para funcionar bien. La mayoría de las proteínas se hacen en el núcleo, pero realizan sus tareas en áreas específicas. Por ejemplo, las Mitocondrias, que son las centrales energéticas de la célula, necesitan importar una gran cantidad de diferentes proteínas para funcionar correctamente. Estas proteínas tienen señales especiales que les ayudan a llegar a su destino correcto.

Proceso de Importación Mitocondrial

Un punto de entrada importante para las proteínas en las mitocondrias es un complejo llamado la translocasa de la membrana mitocondrial externa, o TOM para abreviar. Este complejo está formado por varias partes. El componente principal se llama TOM40, que forma un poro que permite el paso de las proteínas. También hay otras partes, como TOM22, que ayudan a reconocer y unir proteínas que necesitan ser importadas.

Dos partes adicionales, TOM20 y TOM70, son importantes porque reconocen diferentes señales en las proteínas. TOM20 trabaja principalmente con proteínas destinadas a la membrana mitocondrial interna o la matriz. Por otro lado, TOM70 prefiere proteínas que tienen una estructura particular conocida como alfa-hélica, que suelen estar destinadas a la membrana mitocondrial externa o interna.

TOM70 no se queda tan firmemente conectado al complejo central en comparación con TOM20. Por lo general, aparece como un homodímero, lo que significa que existe como dos unidades idénticas. Cuando TOM20 se descompone, aún muestra una fuerte presencia en el complejo, pero se mueve de manera diferente en pruebas que ayudan a visualizar estructuras de proteínas.

Para ayudar a llevar las proteínas a estos puntos de entrada, se necesitan otros ayudantes, llamados chaperonas. Estas chaperonas aseguran que las proteínas no se peguen entre sí y puedan encontrar su camino hacia el Complejo TOM.

Mientras que los científicos creen generalmente que la mayoría de las proteínas se importan a las mitocondrias después de que se producen, algunos indicios sugieren que las proteínas podrían también fabricarse justo al lado de las mitocondrias. Esta idea proviene de notar ribosomas, que son los sitios de síntesis de proteínas, alrededor de las mitocondrias. Algunos experimentos incluso han mostrado que ciertos ARN mensajeros (ARNm) se encuentran cerca de las mitocondrias, insinuando que las proteínas podrían fabricarse en el lugar.

Papel de las Proteínas de Unión a ARN

Las proteínas de unión a ARN (RBPs) son actores importantes en este proceso. Pueden controlar a dónde van los ARNm, cuán estables son y si se traducen en proteínas. Por ejemplo, en levaduras, una RBP llamada Puf3p ayuda a guiar los ARNm hacia las mitocondrias. En mamíferos, dos RBPs bien estudiadas, CLUH y SYNJ2BP, ayudan a gestionar los ARNm que codifican proteínas mitocondriales.

Cuando se elimina CLUH, la cantidad de proteínas producidas a partir de sus ARNm objetivo disminuye, lo que lleva a problemas con la forma de las mitocondrias. Mientras tanto, SYNJ2BP asegura que sus ARNm objetivo permanezcan en el lugar adecuado, especialmente cuando la traducción está bajo estrés. SYNJ2BP también juega un papel en la traducción local, lo que ayuda a mantener la función mitocondrial intacta.

Estudio de las Interacciones del Complejo TOM

En un esfuerzo por comprender mejor cómo interactúan TOMM20 y TOMM70 con otras proteínas, los científicos utilizaron un método llamado etiquetado de proximidad APEX2. Este método ayuda a identificar qué proteínas están cerca e interactuando entre sí. Al adjuntar una pequeña etiqueta a TOMM20 o TOMM70, pudieron identificar qué proteínas estaban específicamente asociadas con cada receptor.

Crearon dos tipos de proteínas de fusión, TOMM20-APEX2 y TOMM70-APEX2, y las introdujeron en células HeLa, que son comúnmente utilizadas en estudios de laboratorio. Se aseguraron de que estas proteínas estuvieran correctamente ubicadas en las mitocondrias, confirmando que su método estaba funcionando como se pretendía.

Validación Funcional de las Proteínas de Fusión

Para asegurarse de que las proteínas de fusión funcionaran correctamente, los científicos utilizaron varios métodos. Buscaron la presencia de sus proteínas etiquetadas en las mitocondrias y evaluaron si causaban efectos negativos en la función mitocondrial.

Descubrieron que ambas proteínas de fusión interactuaban con los componentes clave del complejo TOM. Más pruebas mostraron que TOMM20-APEX2 estaba significativamente presente cuando se extraía del complejo TOM, confirmando que las proteínas de fusión estaban adecuadamente integradas.

Actividad de Biotinilación de las Proteínas de Fusión

A continuación, los investigadores probaron si estas proteínas de fusión podían realizar biotinilación, un proceso donde se adjunta una pequeña molécula llamada biotina a las proteínas, marcándolas para su identificación. Cuando ambas proteínas de fusión se expresaron bajo condiciones específicas, pudieron etiquetar proteínas adicionales, indicando que las proteínas de fusión estaban activas.

Curiosamente, el etiquetado de biotina no se limitó solo a proteínas mitocondriales; también parecía afectar proteínas en el citoplasma circundante. Este resultado indica que las proteínas de fusión pueden tener alguna influencia más allá de su área inmediata.

Análisis de Interacciones de Proteínas

Con las proteínas de fusión confirmadas como activas, los científicos buscaron analizar las interacciones de TOMM20-APEX2 y TOMM70-APEX2 con otras proteínas. Compararon los conjuntos de proteínas identificadas en diferentes condiciones, incluidos controles donde las proteínas de fusión no se expresaron.

En total, identificaron más de 2,000 proteínas diferentes, muchas de las cuales estaban asociadas con funciones mitocondriales. El análisis reveló que había interacciones sustanciales con proteínas del citoplasma e incluso algunas del núcleo.

Curiosamente, mientras que TOMM20 estaba vinculado a muchas RBPs y proteínas relacionadas con la traducción, TOMM70 se asoció principalmente con orgánulos unidos a la membrana. Esta diferencia indica que TOMM20 puede desempeñar un papel más significativo en los procesos de traducción local en comparación con TOMM70.

Interacciones Diferenciales Bajo Estrés de Traducción

Para entender cómo cambiaron los interactomas bajo condiciones de estrés de traducción, los científicos trataron las células con un inhibidor de traducción llamado puromicina. Descubrieron que, a pesar del estrés, muchas interacciones se mantuvieron, aunque algunas proteínas eran más abundantes que otras bajo estas condiciones.

Al examinar qué proteínas eran más prevalentes después de la inhibición de traducción, identificaron varias proteínas relacionadas con la traducción. Esto sugiere que TOMM20 puede tener un papel en manejar la estabilidad de los ARNm durante momentos estresantes.

Conclusión

El trabajo realizado proporciona información sobre cómo los receptores TOMM20 y TOMM70 gestionan diferentes conjuntos de proteínas en las mitocondrias. El estudio confirma que estos receptores interactúan con conjuntos únicos pero a veces superpuestos de preproteínas mitocondriales, estableciendo paralelismos con sus homólogos en levaduras.

Los hallazgos también apoyan la idea de que TOMM20 está involucrado en procesos de traducción local en la membrana externa mitocondrial. Comprender estas interacciones no solo profundiza el conocimiento sobre la función mitocondrial, sino que también puede tener implicaciones para entender cómo las células reaccionan ante el estrés y mantienen su salud.

La investigación enfatiza la complejidad de la clasificación de proteínas y el papel vital de las mitocondrias en la función celular, proporcionando una base para futuras investigaciones en biología mitocondrial y su relevancia para diversas enfermedades.

Resumen de la Metodología

Cultivo Celular

Los investigadores mantuvieron células HeLa 11ht en un medio de crecimiento específico, siguiendo protocolos cuidadosos para asegurar un crecimiento saludable y resultados precisos durante los experimentos.

Construcción de Plásmidos

Utilizando técnicas avanzadas, crearon plásmidos que permitirían la integración de las proteínas de fusión en las células HeLa. Este paso fue crucial para asegurar la correcta expresión de TOMM20 y TOMM70.

Generación de Líneas Celulares Estables

Para producir líneas celulares que expresaran consistentemente las proteínas de fusión APEX2, los científicos emplearon un método que asegura la integración de genes en el ADN de la célula.

Inmunofluorescencia y Fraccionamiento Celular

El equipo realizó varias técnicas de laboratorio, incluida la microscopía de inmunofluorescencia, para visualizar y confirmar la localización de las proteínas de fusión. También fraccionaron las células para separar los componentes mitocondriales y citoplasmáticos para un análisis más detallado.

Etiquetado de Proximidad

Al inducir la biotinilación bajo condiciones controladas, pudieron capturar y analizar proteínas que interactuaban cerca del complejo TOM. Esta metodología es esencial para comprender el entorno local alrededor de los receptores mitocondriales.

Análisis de Espectrometría de Masas

Finalmente, las proteínas capturadas a través del etiquetado de proximidad pasaron por un análisis sofisticado de espectrometría de masas para determinar sus identidades. Esto permitió obtener información significativa sobre qué proteínas estaban interactuando con TOMM20 y TOMM70 en varios contextos celulares.

Esta combinación de técnicas da una visión completa de las intrincadas interacciones en las vías de importación mitocondrial, allanando el camino para una mejor comprensión de la dinámica mitocondrial.

Fuente original

Título: Proximity labeling reveals differential interaction partners of the human mitochondrial import receptor proteins TOMM20 and TOMM70

Resumen: Import of most mitochondrial proteins requires that their precursor proteins are bound by the (peripheral) receptor proteins TOM20, TOM22, and TOM70. For budding yeast TOM20 and TOM70, there is evidence of specific yet overlapping substrate recognition, but no such data is available for metazoan cells. Using APEX2-based proximity labeling, we thus created association profiles for human TOMM20 and TOMM70 in HeLa cells. We particularly focused on their interaction with RNA-binding proteins (RBPs) since there is evidence for RNA association with the mitochondrial outer membrane (MOM) and local translation at the mitochondrial surface, but these processes are poorly understood. Our results show a preferred association of several RBPs and translation factors with TOMM20 over TOMM70. These include SYNJBP2, a previously identified membrane-bound RBP that binds and protects mRNAs encoding mitochondrial proteins. Translational inhibition by puromycin resulted in an even increased association of these RBPs with TOMM20 compared to TOMM70, suggesting that TOMM20 but not TOMM70 might play a role in preserving cellular hemostasis during translation stress by retaining protective RBPs and translation-related proteins at the MOM.

Autores: Ralf-Peter Jansen, S. Akram, K. I. Zittlau, B. Macek

Última actualización: 2024-10-31 00:00:00

Idioma: English

Fuente URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.10.25.620316

Fuente PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.10.25.620316.full.pdf

Licencia: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Cambios: Este resumen se ha elaborado con la ayuda de AI y puede contener imprecisiones. Para obtener información precisa, consulte los documentos originales enlazados aquí.

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