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# 生物学# 分子生物学

TurboIDを使ったタンパク質相互作用研究の強化

TurboIDとPL-MSを使ったタンパク質間相互作用の研究方法の改善。

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目次

近接ラベリング質量分析(PL-MS)は、科学者がタンパク質同士の相互作用や細胞内での分布、RNAやDNAとの結びつき方を研究するのに役立つ便利な方法だよ。研究で使われる一つのバリアントがTurboIDで、これは近くにいるタンパク質にビオチンを付けるのにめっちゃ効果的な改良酵素なんだ。ビオチンは特定のビーズに強く結合するビタミンの一種だよ。

TurboIDの仕組み

TurboIDは研究したいタンパク質にくっつけられる。TurboIDが細胞に存在しているとき、近くのタンパク質にビオチンが付けられる。このタグ付けのプロセスの後、科学者はビオチンにくっつく特別なビーズを使って、混合物からタグ付けされたタンパク質を引き抜くことができる。この方法だと、タンパク質が精製プロセス中に一緒に留まっている必要がないから、PL-MSが古い方法よりも感度が高くなるんだ。

PL-MSの現在の使用と限界

PL-MSは多様性があって、短時間で多くの情報を集められるから人気だよ。でも、特定のタンパク質が少なかったり、他のタンパク質との結びつきが弱い場合に問題が出ることがある。時々、集めたデータには不要なタンパク質が多く含まれていて、研究者が興味のある特定の相互作用を見つけるのが難しくなるんだ。

この問題を乗り越えるために、研究者はタンパク質にタグを付けるためのいくつかのアプローチを試してきた。ほとんどの研究はタンパク質レベルでのタグ付けに焦点を当ててるけど、ペプチドレベルでのタグ付けに特化した研究は少ない。この方法は直接ビオチンタグ付きのタンパク質の断片を特定するから、他のタンパク質からのバックグラウンドノイズによるエラーを減らせるんだ。

研究の目的

私たちの研究では、ペプチドレベルでのタグ付けを強化することでPL-MSの感度を改善することを目指したよ。私たちは、少量しか存在せず、他のタンパク質との相互作用が短いことで知られるSPYというタンパク質と一緒にTurboIDを使ったんだ。以前の研究でSPYに関連するターゲットをすでに特定していたから、そこから出発する良い基盤があったんだ。

感度を改善するために、タンパク質抽出プロセス中に異なるビーズ、ビオチン濃度、洗浄方法を試したよ。タンパク質レベルとペプチドレベルの濃縮結果を比較して、知られたターゲットと新しい相互作用を検出する性能を見たんだ。

ワークフローと選ばれた系統の比較

私たちの方法をテストするために、SPY-TurboIDという特定の植物系統を使ったよ。このタンパク質は植物にいろんな方法で役立つから、実験でどれだけ効果的かを見たかったんだ。私たちは、TurboID融合タンパク質が植物システムでうまく機能することを確認したよ。

機能を確認した後、SPY-TurboID植物に異なる濃度のビオチンを処理して、どのタンパク質がタグ付けされたかを分析した。ビオチン濃度を上げてもタグ付けされたタンパク質の量が大きく増えなかったから、弱い相互作用か少量のタンパク質が関係しているかもしれないって感じたんだ。

異なるビーズタイプの評価

その後、ビオチン化タンパク質を濃縮する能力についていくつかのビーズタイプを評価したよ。M280ストレプトアビジンビーズがビオチンタグ付きタンパク質をキャッチするのに最もよく働いて、特定された相互作用の数も増えた。抗体ベースの方法も試したけど、バックグラウンドタンパク質を多くキャッチするから効果が低かったよ。

M280ビーズを使って、いろんなビオチン濃度とより効果的な洗浄技術で実験を行った。このおかげで、興味のあるタンパク質を選択的に捕らえつつ、不要なタンパク質からの干渉を減らすことができたんだ。

検出と定量の強化

SPYの相互作用体の検出をさらにブーストするために、タグ付けプロセスの間により高いビオチン濃度を試したよ。驚いたことに、500 µMのビオチンを使うと、標準の50 µMに比べてビオチン化タンパク質の検出が良くなったんだ。高濃度はもっと信頼性があって、強力な結果を出して、私たちの実験におけるその重要性を際立たせたよ。

データ分析のためにMaxquantとMSFraggerの二つの異なるソフトウェアツールを比較したんだけど、MSFraggerはビオチン化ペプチドの検出で常により良いパフォーマンスを示したから、SPYに関連するより多くのタンパク質が特定できたんだ。

洗浄手順の最適化

実験の間に、ビーズがチューブの側にくっついてサンプルの完全な回収を妨げるビーズの崩壊という問題に直面したよ。この問題に対処するために、手順の洗浄ステップを修正したんだ。特定の洗浄溶液を避けることで、ビーズの崩壊を最小限に抑えて、全体的なサンプル回収を改善したよ。

洗浄手順を調整した後、MaxquantとMSFraggerを使ってSPY-TurboIDサンプルからより多くのタンパク質を特定できることがわかったんだ。これは、PL-MSプロセスをより効率的で信頼性の高いものにする大きな進展だったよ。

ペプチドレベルとタンパク質レベルの濃縮比較

実験を行った後、ペプチドレベルとタンパク質レベルの濃縮結果を比較したよ。興味深いことに、両方の方法がSPYと相互作用するタンパク質についてユニークな洞察を提供してくれた。タンパク質レベルの濃縮はより多くの知られたターゲットを特定したけど、ペプチドレベルの濃縮は追加の新しい相互作用体を明らかにした。この補完的な関係は、両方の技術を組み合わせて使う重要性を強調しているんだ。

核膜タンパク質レベルへの影響

私たちの研究のもう一つの焦点は、SPYが核内外の物質輸送に関与する特定のタンパク質、すなわち核膜タンパク質のレベルに影響を与えるかどうかを理解することだったよ。安定同位体標識という技術を用いて、SPYが特定の変異植物の核膜タンパク質レベルにどのように影響するかを評価したんだ。結果は、SPY変異体植物におけるいくつかの核膜タンパク質が通常のものに比べて低い量で存在していることを示唆していたよ。

結論

要するに、私たちの研究はタンパク質相互作用を研究するためのPL-MSで使われる方法を成功裏に強化したんだ。いろんなアプローチを試すことで、SPYに関連する60の既知のターゲットと100の新しい相互作用体を特定したよ。この発見は細胞内のタンパク質相互作用の複雑さを照らし出し、技術の向上が生物学的研究でのさらなる洞察に繋がることを強調しているんだ。

私たちが行った仕事は異なるタンパク質や文脈に応用できるだけでなく、さまざまな生物学的プロセスにおけるタンパク質相互作用のダイナミクスに関する将来の研究の可能性も提供しているよ。かなりの改善を果たしたけど、バックグラウンドノイズや見逃した相互作用など、残された課題もあることを認識しているんだ。進行中の技術革新を通じて、これらの方法をさらに洗練させて、細胞生物学における応用を広げていきたいと思ってるよ。

オリジナルソース

タイトル: Workflow enhancement of TurboID-mediated proximity labeling for SPY signaling network mapping

概要: TurboID-based proximity labeling coupled to mass spectrometry (PL-MS) has emerged as a powerful tool for mapping protein-protein interactions in both plant and animal systems. Despite advances in sensitivity, PL-MS studies can still suffer from false negatives, especially when dealing with low abundance bait proteins and their transient interactors. Protein-level enrichment for biotinylated proteins is well developed and popular, but direct detection of biotinylated proteins by peptide-level enrichment and the difference in results between direct and indirect detection remain underexplored. To address this gap, we compared and improved enrichment and data analysis methods using TurboID fused to SPY, a low-abundance O-fucose transferase, using an AAL-enriched SPY target library for cross-referencing. Our results showed that MyOne and M280 streptavidin beads significantly outperformed antibody beads for peptide-level enrichment, with M280 performing best. In addition, while a biotin concentration [≤] 50 {micro}M is recommended for protein-level enrichment in plants, higher biotin concentrations can be used for peptide-level enrichment, allowing us to improve detection and data quality. FragPipes MSFragger protein identification and quantification software outperformed Maxquant and Protein Prospector for SPY interactome enrichment due to its superior detection of biotinylated peptides. Our improved washing protocols for protein-level enrichment mitigated bead collapse issues, improving data quality, and reducing experimental time. We found that the two enrichment methods provided complementary results and identified a total of 160 SPY-TurboID-enriched interactors, including 60 previously identified in the AAL-enriched SPY target list and 100 additional novel interactors. SILIA quantitative proteomics comparing WT and spy-4 mutants showed that SPY affects the protein levels of some of the identified interactors, such as nucleoporin proteins. We expect that our improvement will extend beyond TurboID to benefit other PL systems and hold promise for broader applications in biological research.

著者: shouling xu, T. S. Grismer, S. S. Karundasa, R. Shrestha, D. Byun, W. Ni, A. V. Reyes

最終更新: 2024-02-18 00:00:00

言語: English

ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.17.580820

ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.17.580820.full.pdf

ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/

変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。

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