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Avances en Proteómica: El Método GAPPIS

GAPPIS combina técnicas basadas en gel y de escopeta para mejorar el análisis de proteínas.

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La Proteómica es el estudio de las proteínas, especialmente sus funciones y estructuras. En el pasado, los científicos usaban principalmente métodos basados en gel para este análisis. Estos métodos consistían en separar proteínas usando geles y luego analizar qué proteínas estaban presentes. Este proceso era lento y requería mucho trabajo, pero ayudó a hacer descubrimientos importantes, especialmente en áreas como el cáncer y el desarrollo de medicamentos.

Los Primeros Días: Proteómica Basada en Gel

Al principio, los investigadores usaban técnicas como la electroforesis en gel unidimensional (1D-PAGE) y la electroforesis en gel bidimensional (2D-PAGE). La 1D-PAGE separa proteínas en un gel según su tamaño. Las proteínas se tratan con un químico para desdoblarlas y luego se colocan en un campo eléctrico. Las proteínas más pequeñas se mueven más rápido a través del gel, mientras que las más grandes se mueven más lento y no avanzan tanto. Después de esta separación, las proteínas se tiñen para verlas claramente.

En la 2D-PAGE, el proceso es más complejo y proporciona una mejor separación. Combina dos métodos: primero, clasifica las proteínas según su carga y luego las clasifica de nuevo por tamaño. Esto crea un patrón que muestra muchas proteínas diferentes y sus formas.

A pesar de su utilidad, los métodos basados en gel tenían desventajas significativas. Tomaban mucho tiempo, y los investigadores solo podían identificar un número limitado de proteínas. Además, era difícil cuantificar las proteínas con precisión. Aun con estas limitaciones, las técnicas basadas en gel fueron vitales para los primeros estudios de proteómica.

El Cambio a la Proteómica "Shotgun"

A medida que la investigación avanzaba, los científicos buscaban métodos más rápidos y eficientes, lo que llevó al desarrollo de la proteómica "shotgun" o "de abajo hacia arriba". En esta técnica, las proteínas se descomponen en piezas más pequeñas, o Péptidos, y luego se analizan. Este método permite a los científicos analizar un rango más amplio de proteínas y obtener información más detallada.

Sin embargo, este enfoque también tiene algunos desafíos. Un gran problema es la pérdida de información sobre el tamaño de las proteínas. Esta información es crucial, especialmente al estudiar fragmentos de proteínas anormales relacionados con enfermedades.

Cuando las proteínas se descomponen, puede ser difícil detectar ciertos cambios, como cuando una proteína es cortada por una enzima. Aunque las piezas faltantes podrían insinuar tales cambios, el análisis de datos puede ser complejo y a menudo lleva a perder información importante.

Un Nuevo Enfoque: GAPPIS

Para abordar las limitaciones de los métodos basados en gel y "shotgun", los investigadores desarrollaron una nueva técnica llamada Gel-Assisted Proteome Position Integral Shift (GAPPIS). Este método busca combinar los beneficios de las técnicas basadas en gel con la eficiencia de la proteómica "shotgun".

En GAPPIS, las proteínas se separan usando geles, pero en lugar de analizar muchas piezas pequeñas, solo se cortan dos piezas de gel más grandes en diagonal. Esto permite a los investigadores estimar con precisión el tamaño de miles de proteínas. Al examinar las dos piezas, los científicos pueden calcular la proporción de cantidades de proteína en cada pieza. Esta proporción ayuda a estimar el tamaño de las proteínas.

El método GAPPIS utiliza una técnica de etiquetado especial para marcar las proteínas antes del análisis. Luego, las proteínas se examinan usando Espectrometría de masas avanzada, una técnica poderosa para identificar y cuantificar proteínas. Este nuevo enfoque proporciona información valiosa mientras utiliza muchas menos muestras que los métodos anteriores.

Probando GAPPIS

Para ver qué tan bien funciona el método GAPPIS, los investigadores realizaron experimentos en células HeLa, un tipo común de célula cancerosa utilizada en investigación. Trataron estas células con un compuesto que induce la muerte celular y activa enzimas que cortan proteínas. El objetivo era identificar las proteínas afectadas por estos cortes.

Los investigadores descubrieron muchas proteínas involucradas en este proceso, confirmando algunas proteínas previamente identificadas y descubriendo otras nuevas. Esto demostró que el método GAPPIS es una forma confiable de encontrar sustratos de proteínas, especialmente en el contexto de la muerte celular.

Entendiendo el Peso Molecular (MW)

Una de las características clave de GAPPIS es su capacidad para estimar el peso molecular de las proteínas, lo cual es crucial para entender sus funciones. El peso molecular se refiere a qué tan pesada es una proteína según su tamaño y estructura. En GAPPIS, el peso molecular se infiere de la proporción de cantidades de proteína en las dos piezas de gel.

Para garantizar la precisión de las estimaciones de peso molecular, los investigadores usan proteínas conocidas con tamaños bien definidos como referencias. Al comparar las proporciones del análisis GAPPIS con estos estándares, los científicos pueden crear una curva de calibración para estimar con precisión el peso molecular de otras proteínas.

Análisis y Hallazgos

A través de pruebas exhaustivas del método GAPPIS, los investigadores identificaron miles de proteínas y cuantificaron su abundancia. Encontraron una fuerte correlación entre los pesos moleculares estimados y los tamaños reales de las proteínas. Esto significa que GAPPIS proporciona estimaciones confiables del tamaño de las proteínas, lo cual es esencial para entender cómo funcionan las proteínas en varios procesos biológicos.

En los experimentos, los investigadores también observaron cómo ciertas proteínas cambiaron de tamaño tras el tratamiento con el compuesto. Al medir cambios en el peso molecular, identificaron proteínas que fueron cortadas por las enzimas activas durante la muerte celular.

Análisis Complementarios

Además de medir los cambios en el peso molecular, los investigadores utilizaron varias otras técnicas para confirmar sus hallazgos. Por ejemplo, analizaron péptidos semi-tríticos, que son piezas de proteínas que tienen un sitio de corte trítico. Este análisis ayuda a localizar dónde se cortan las proteínas, proporcionando evidencia adicional de la actividad de la enzima.

Los investigadores también utilizaron métodos estadísticos para analizar la distribución de pesos moleculares entre diferentes proteínas. Esto incluyó calcular la desviación estándar, que indica cuánta variación hay en los tamaños estimados de los fragmentos de proteínas. Una disminución en la desviación estándar después del tratamiento puede sugerir que una proteína ha sido cortada.

Conclusión

GAPPIS representa un avance prometedor en la proteómica, ofreciendo un método de alto rendimiento para analizar el tamaño de las proteínas e identificar sustratos de enzimas proteolíticas. Al combinar técnicas del análisis tradicional en gel y métodos cuantitativos modernos, GAPPIS permite a los investigadores obtener una comprensión más profunda de las funciones y actividades de las proteínas en células vivas.

Este nuevo método podría mejorar enormemente nuestra comprensión de las proteasas y sus objetivos, facilitando la exploración de posibles objetivos terapéuticos para enfermedades como el cáncer. Con más investigación y aplicación, GAPPIS puede proporcionar información valiosa que puede llevar al desarrollo de nuevos tratamientos y mejorar nuestro conocimiento de los procesos biológicos a nivel molecular.

Direcciones Futuras

El futuro de la proteómica radica en refinar aún más métodos como GAPPIS e integrarlos con otras tecnologías. Áreas potenciales de exploración incluyen el uso de GAPPIS para estudiar otras enfermedades, investigar diferentes tipos de células y combinarlo con técnicas genómicas para entender mejor las relaciones entre genes y proteínas.

Los avances en espectrometría de masas también ayudarán a mejorar la precisión y eficiencia del análisis de proteínas. A medida que los instrumentos se vuelvan más sofisticados, los investigadores podrán obtener datos más detallados y confiables, ayudando en el descubrimiento de nuevas interacciones y funciones de proteínas.

A medida que nuestro conocimiento de la proteómica se expande, también lo harán las aplicaciones potenciales en medicina, biotecnología e investigación biológica fundamental. El desarrollo continuo de técnicas innovadoras ayudará a los científicos a descubrir las complejidades de la función y regulación de las proteínas en la salud y la enfermedad.

Fuente original

Título: Gel-Assisted Proteome Position Integral Shift (GAPPIS) Assay Returns Molecular Weight to Shotgun Proteomics and Identifies Novel Caspase 3 Substrates

Resumen: Here we present a high-throughput virtual top-down proteomics approach that restores the molecular weight (MW) information in shotgun proteomics, and demonstrate its utility in studying proteolytic events in programmed cell death. With Gel-Assisted Proteome Position Integral Shift (GAPPIS), we quantified over 7000 proteins in staurosporine-induced apoptotic HeLa cells and identified 84 proteins exhibiting in a statistically significant manner at least two of the following features: 1) a negative MW shift; 2) an elevated ratio in a pair of a semi-tryptic and tryptic peptide, 3) a negative shift in the standard deviation of MW estimated for different peptides, and 4) a negative shift in skewness of the same data. Of these proteins, 58 molecules were novel caspase 3 substrates. Further analysis identified the preferred cleavage sites consistent with the known caspase cleavages after the DXXD motif. As a powerful tool for high-throughput MW analysis simultaneously with the conventional expression analysis, GAPPIS assay can prove useful in studying a broad range of biological processes involving proteolytic events.

Autores: Roman A. Zubarev, Z. Meng, A. A. Saei, X. Zhang, H. Lyu, H. Gharibi, S. L. Lundstrom, A. Vegvari, M. Gaetani

Última actualización: 2024-02-17 00:00:00

Idioma: English

Fuente URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.14.579877

Fuente PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.14.579877.full.pdf

Licencia: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

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